Лабораторная работа № 7. Получение каллусной ткани из листьев табака
Для растения in vivo каллус — это группа клеток, возникающая при травмах и защищающая место поранения (раневая паренхима). В ней накапливаются питательные вещества для регенерации анатомических структур или утраченного органа. На питательных средах с большим содержанием ауксинов (2,4-Д) клетки экспланта дедифференцируются. Клетки утрачивают прежние функции и морфологию. Особенности… Читать ещё >
Лабораторная работа № 7. Получение каллусной ткани из листьев табака (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Для растения in vivo каллус — это группа клеток, возникающая при травмах и защищающая место поранения (раневая паренхима). В ней накапливаются питательные вещества для регенерации анатомических структур или утраченного органа. На питательных средах с большим содержанием ауксинов (2,4-Д) клетки экспланта дедифференцируются. Клетки утрачивают прежние функции и морфологию. Особенности дедифференциации клеток экспланта зависят от генетики экспланта. Причем чем менее дифференцирована клетка, тем легче получить каллус. Дедифференциация специализированных клеток начинается с обогащения их элементами цитоплазмы: микротрубочками, мембранами ЭПС и комплекса Гольджи, рибосомами; исчезают хлорои хромопласты, продукты их деятельности; может образоваться много ядер или увеличиться число хромосом; укрупняются вакуоли. Каллус, выращиваемый поверхностным способом, представляет собой аморфную массу тонкостенных паренхимных клеток, не имеющую строго определенной структуры. Клетки каллуса либо бесцветны, либо имеют желтоватый оттенок. В зависимости от происхождения и условий культивирования, различают каллусы: рыхлые, с сильно оводненными, легко отделяющимися друг от друга клетками; средней плотности, с зонами меристематической активности; плотные, с зонами редуцированного камбия и сосудов.
В биотехнологии чаще всего используют те виды растений, которые и в обычных условиях легко укореняются, регенерируют, образуют каллус. Клетки табака легко дедифференцируются и переходят к делению, образуя быстрорастущую каллусную ткань. Поэтому большинство методов получения и культивирования каллуса разработано для табака. Каллусы можно получить практически из любой части растения. Для культивирования каллусов из листьев табака используют среду Мурасиге — Скуга (МС) с добавлением ауксинов (2,4-Д).
Цель работы: освоить метод приготовления питательной среды для получения каллусной культуры табака.
Оборудование и материалы: чашки Петри со стерильной питательной средой МС для индукций каллусогенеза, 6%-й раствор хлорамина, колбы со стерильной дистиллированной водой.
Объект исследования: растения табака.
Таблица 1
Приготовление маточных растворов для среды Мурасиге — Скуга (МС).
Компоненты среды | Количество вещества |
Маточный раствор макросолей (г на 1 л маточного раствора) | |
KNOg. | |
nh4no3 | |
КН2Р04 | 3,4. |
MgS04 • 7Н20. | 7,4. |
или MgS04 безводный. | 3,6. |
СаС12 • 2Н20. | 8,8. |
или СаС12 безводный. | 6,65. |
Маточный раствор микросолей (мг на 100 мл маточного раствора) | |
Na2Mo04 • 2Н20. | |
CuS04 • 5Н20. | 2,5. |
Н3В03 | |
MnS04 • 5Н20. | |
или MnS04 • 4Н20. | |
ZnS04 • 7Н20. | |
KJ. | |
СоСЬ2 • 6Н20. | 2,5. |
FeS04 | |
Na2 ЭДТА. |
Таблица 2
Среда Мурасиге — Скуга (МС) для клеточных и тканевых культур
Компоненты питательной среды | |
Маточный раствор макросолей. | 50 мл/л. |
Маточный раствор микросолей. | 1 мл/л. |
Fe-хелат. | 5 мл/л. |
Окончание табл. 2
Компоненты питательной среды | |
СаС12 | 5 мл/л. |
Тиамин-НС1. | 1 мг/л. |
Пиридоксин-НС1. | 0,5 мг/л. |
Никотиновая кислота. | 0,5 мг/л. |
Мезоинозит. | 100 мг/л. |
Глицин. | 2 мг/л. |
Сахароза. | 30 г/л. |
Агар-агар | 7 г/л. |
pH 5,6—5,8. |
Ход работы.
Приготовить питательные среды МС с добавлением: а) 1,0 мг/л 2,4-Д + + 0,2 мг/л БАП; б) 1,0 мг/л ИУК + 0,2 мг/л БАП. Листья табака поместить в дезинфицирующий раствор на 5 мин, затем промыть стерильной дистиллированной водой три раза.
Стерильным скальпелем вырезать сегменты у основания листа ближе к центральной жилке длиной 1,5—2 см, шириной 1 см. Для лучшего каллусообразования делают насечки по всей поверхности сегмента. Поместить экспланты на питательные среды (перед каждой манипуляцией инструменты обрабатывать спиртом и обжигать на пламени спиртовки). Чашки Петри с эксплантами перенести в термостат для индукций каллусогенеза при температуре 25 °C.
Задание. Результаты опыта рассмотреть через две — четыре недели, зарисовать, сравнить каллус, полученный на среде с ИУК, с каллусом, полученным в среде с 2,4-Д. Сделать выводы.