Заказать курсовые, контрольные, рефераты...
Образовательные работы на заказ. Недорого!

Тканевая организация цестод

Диссертация: Тканевая организация цестод
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Анализ формирования и развития зачатков на примере протоков и аппаратов репродуктивной системы у цестод из разных отрядов позволил обратить внимание на тот факт, что в пределах отряда Cyclophyllidea увеличивается разнообразие путей морфогенеза, в результате чего формирование половых протоков лишь частично напоминает процессы, наблюдаемые у низших цестод. Во-первых, наряду с формированием полостей… Читать ещё >

Содержание

  • Общая характеристика работы
  • ГЛАВА 1. Материалы и методы
    • 1. 1. Материал
      • 1. 1. 1. Систематическое положение 15 исследованных червей
      • 1. 1. 2. Сбор паразитологического материала
    • 1. 2. Методики
      • 1. 2. 1. Методы получения и культивирования 19 первых стадий развития модельного вида Triaenophorus nodulosus
      • 1. 2. 2. Методы ультраструктурных исследований
        • 1. 2. 2. 1. Трансмиссионная электронная микроскопия
        • 1. 2. 2. 2. Сканирующая электронная микроскопия
      • 1. 2. 3. Авторадиографические исследования
      • 1. 2. 4. Световая микроскопия
  • ГЛАВА 2. Морфофункциональная организация свободноплавающей личинки — корацидия
    • 2. 1. История изучения
    • 2. 2. Корацидий Triaenophorus nodulosus
      • 2. 2. 1. Покровы
      • 2. 2. 2. Мускулатура, экстраклеточные матриксы, 31 контакты
      • 2. 2. 3. Малодифференцированные клетки
      • 2. 2. 4. Железы проникновения
      • 2. 2. 5. Нервная система
      • 2. 2. 6. Экскреторная система

Тканевая организация цестод (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Изучение становления тканевой организации и возникновения в процессе эволюции истинных многоклеточных животных относятся к фундаментальным проблемам современной зоологии. Разные таксоны, стоящие в основании филогенетического древа, демонстрируют различные уровни организации тканевых систем, сочетающих в себе примитивные и прогрессивные признаки. Возникновение многоклеточности и тканевой организации у животных, по мнению А. А. Заварзина (1953) произошло при формировании пограничных тканей и внутренней среды, которая появляется вместе с пограничной тканью (поскольку только у многоклеточных организмов пограничность обеспечивается не клеточной мембраной, а совокупностью клеток, объединенных в пограничную тканевую структуру). Такая самая общая классификация позволяет сравнивать тканевую организацию у животных, стоящих на самых разных ступенях развития многоклеточности. Далее этапы становления тканевой организации подчинялись требованиям более узкой функциональной тканевой специализации, более устойчивой клеточной дифференциации и возникновения собственной камбиальности.

Наиболее изученными из низших многоклеточных в данном отношении являются губки, у которых, по мнению Г. П. Коротковой (1981) и А. В. Ересковского (2005), возникли и еще лишенные собственного камбия примитивные органы, и примитивные тканевые структуры, причем оба эти уровня надклеточной организации практически совпадают. Исследования тканевых систем у кишечнополостных были проведены на представителе сцифомедуз Aurelia aurita (Напара, 1995). У этих животных, первично лишенных мезодермы, из эпителиальных элементов возникает особая линия свободных клеток, способная к росту и самоподдержанию, которую автор рассматривает как самостоятельную тканевую систему, обладающую собственной камбиальностью и сопоставимую по уровню своей гистологической обособленности с системами клеток крови других многоклеточных (Напара, 1995). Плоские черви представляют собой очень пеструю и недостаточно изученную группу. Даже в пределах класса Turbellaria существуют значительные вариации: существует мнение, что бескишечные турбеллярии не обладают еще тканевой организацией, лишь их покровы начинают приобретать признаки эпителиальности (Богута, Миничев, 1976) — в других исследованиях показано, что периферическая паренхима Acoela сочетает в себе топографически не разделенные, растущие и обновляющиеся клеточные популяции, т. е. появление различий по кинетическим характеристикам опережает пространственное оформление системы — эпителизацию гистологических структур (Дробышева, 1983). Среди турбеллярий типичная тканевая организация рассматривается только у представителей Polycladida (Богута, Миничев, 1976; Дробышева, 1987). Исследования тканевой организации остальных плоских червей крайне фрагментарны, и существующие работы выполнены, в основном, на светооптическом уровне.

Цестоды, как объект исследования, привлекательны тем, что с одной стороны, находятся в основании филогенетического древа и отражают один из ранних этапов формирования тканевой организациис другой стороны, относятся к паренхимным животным, не обладающим циркуляторными системами, и представляют особый путь интеграции многоклеточных организмов. У цестод исследованы локализация и некоторые параметры митотического цикла малодифференцированных клеток, как единой популяции (Wikgren, 1964, 1966; Wikgren, Gustafsson, 1967, 1971; Gustaffson, 1973, 1976 a-c и др.), в то же время попыток проследить судьбу отдельных субпопуляций малодифференцированных клеток и исследовать характерные для них кинетические параметры, предпринято не было. Признание того факта, что морфогенезы эволюционируют и основные их закономерности сложились на первых этапах становления многоклеточности (Беклемишев, 1925; Миничев, 1982 и др.), приводит к тому, что изучение морфогенезов плоских червей, как животных находящихся в процессе становления тканевой организации, становится необходимым условием для понимания филогенетических и онтогенетических изменений морфогенезов высших Metazoa. Небольшое количество и разнообразие клеточных элементов позволяют на современном уровне проследить судьбу всех специализированных систем во время метаморфоза, при переходе личинки цестод к паразитизму. Существующих в настоящее время сведений о морфогенетических закономерностях в процессах метаморфоза (Ogren, 1961, 1962, 1968; Stunkard, 1962), а также в период формирования репродуктивной системы (Sulgostovska, 1972, 1974, 1980; Галкин, 1979) явно недостаточно, они проведены на светооптическом уровне и преимущественно на представителях отряда Cyclophyllidea. Стробилярный характер организации на завершающем этапе жизненного цикла цестод позволяет в различных члениках одного и того же животного поэтапно проследить морфогенетические изменения (на примере формирования половой системы). Затем на основании полученных данных появляется возможность выявить формообразовательные механизмы и эволюцию этих механизмов в различных таксонах цестод. Обитание цестод в широком круге позвоночных и беспозвоночных хозяев, наличие многочисленных адаптаций к паразитическому образу жизни, а также многообразие формообразовательных потенций, присущее низшим Metazoa, приводят к многообразным морфофункциональным трансформациям примитивных тканей, и позволяют исследовать эволюционные тенденции развития различных гистологических структур.

Цели и задачи исследования.

Цель настоящей работы — установить характер и структурные особенности тканевой организации плоских червей на примере класса Cestoda.

В задачи работы входило:

1. Охарактеризовать прогрессивные и примитивные черты тканевой организации цестод и определить их гистологический статус;

2. У модельного вида на всех стадиях жизненного цикла установить клеточный состав и исследовать особенности тканевой организации, сделав основной акцент на изучении специфической ткани внутренней среды — паренхимы, проследить ее становление в онтогенезе и выяснить вопрос о существовании специализированных паренхимных элементов;

3. Изучить кинетические и ультраструктурные характеристики популяции камбиальных элементов;

4. Установить особенности и закономерности протекания морфогенетических процессов на разных стадиях жизненного цикла: во время метаморфоза, при переходе личинки к паразитическому образу жизни, и у взрослого паразита, при формировании репродуктивной системы;

5. Исследовать тканевую пластичность на данном эволюционном уровне развития животных на примерах взаимоотношений: эпителий маткиразвивающиеся зародышитегумент — симбионтная микрофлораа также адаптационные изменения гладкой мускулатуры цестод в прикрепительных и копулятивных аппаратах.

Научная новизна.

1. Работа представляет собой первое монографическое исследование тканевой организации плоских червей на примере класса Cestoda. Впервые охарактеризованы примитивные и прогрессивные гистологические признаки, проявляющиеся в структуре популяции камбиальных элементов и закономерностях протекания морфогенетических процессов. При изучении тканевой полифункциональности продемонстрированы тенденции усложнения в процессе эволюции взаимоотношений маточного эпителия и развивающихся зародышей. Впервые для цестод описаны плацентоподобные структуры.

2. Исследована морфологическая основа и локализация процессов симбионтного пищеварения, как пример адаптационной пластичности полифункционального тегумента цестод. Установлено, что симбионтную микрофлору, наряду с традиционными бактериями, составляют многочисленные наноформы.

3. Определены параметры митотического цикла для камбиальных элементов, формирующих различные отделы репродуктивной системы. Впервые установлено, что каждый отдел половой системы формируется особой популяцией малодифференцированных клеток, характеризующихся собственными параметрами митотического цикла.

4. На модельном виде показано, что специализированные паренхимные элементы отсутствуют на всех стадиях жизненного цикла. Впервые для плоских червей изучены принципы формирования паренхимной организации, показано, что паренхима цестод, как разновидность тканей внутренней среды, формируется клеточными элементами другой гистологической принадлежности на основе явления метаплазии.

5. Впервые на ультраструктурном уровне рассмотрены процессы преобразования всех систем личинки в процессе метаморфоза.

6. Исследование формообразовательных закономерностей на различных стадиях жизненного цикла (у модельного вида) и у цестод из филогенетически отдаленных семейств позволило установить общие принципы, выявить тенденции усложнения и проиллюстрировать эволюцию морфогенезов соматических структур.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Цестоды находятся на протканевом уровне развития, который является первичным состоянием для таксона, а не возник в результате вторичного упрощения, связанного с переходом к паразитическому образу жизни.

2. Цестоды лишены специализированной соединительной ткани, т. е. ткани внутренней среды, поскольку обладают очень бедно представленными межклеточными матриксами и не имеют специализированных паренхимных элементов. Паренхимная организация формируется на основе процесса метаплазии, когда мышечные, железистые и другие специализированные клеточные элементы берут на себя функции тканей внутренней среды, не утрачивая своих типовых особенностей.

3. В жизненном цикле цестод присутствует катастрофический метаморфоз, в ходе которого все провизорные системы онкосферы резорбируются и формируются у процеркоида de novo под руководством активно развивающейся на этой стадии нервной системы.

4. Морфогенезы цестод протекают по различным сценариям, либо по примитивному сборочному или клеточному, либо по более эволюционно продвинутому эпителиальному пути, то есть на данном этапе развития тканевых систем происходит эволюционное усложнение морфогенезов.

5. Богатые формообразовательные потенции и полифункциональность клеточных систем служат морфологической основой для прогрессивной эволюции цестод.

Теоретическая и практическая значимость.

Исследования выполнены в 1986;2006 гг. по бюджетной тематике.

ИБВВ РАН (Изучение цитодифференцировки и ультраструктуры половых протоков репродуктивной системы цестод № г/р 01.960.4 505- Морфологические адаптации гельминтов в филогенезе № г/р 01.20.603 830- Структурно-физиологические исследования паразитических плоских червей в онтои филогенезе № г/р 01.20.12 281), грантов РФФИ (94−04−11 550- 9604−49 080- 98−04−48 465- 03−04−48 271) и является частью проектов, направленных на изучение морфофункциональной организации различных органов и систем цестод. Работа служит первым систематическим исследованием тканевой организации и морфогенетических закономерностей у плоских червей на примере класса Cestoda. Обобщение ультраструктурных и экспериментальных данных позволяет сформулировать основные признаки тканевой организации цестод и использовать их для адекватной характеристики других таксонов плоских червей. Полученный фактический материал может быть включен в учебники по зоологии и частной паразитологии.

Апробация работы.

Результаты исследований были доложены на Всесоюзных, Всероссийских и международных конференциях «Систематика, таксономия и фауна паразитов», Москва, 1996 г.- II съезде паразитологического общества РАН «Экологический мониторинг паразитов», Санкт-Петербург, 1997 г.- на симпозиуме «Роль Российской гельминтологической школы в развитии паразитологии», Москва, 1997 г.- на конференции «Взаимоотношения паразита и хозяина», Москва, 1998 г.- на юбилейном заседании в ГОСНИОРХ, Санкт-Петербург, 1999 г.- VIII European Multicolloquium of Parasitology, Poznan, Poland, 2000; «Ecological Parasitology of the turn of Millenium», St.-Peterburg, 2000; на конференции «Паразиты рыбсовременные аспекты изучения», Борок, 2003 г., на Сибирской зоологической конференции, Новосибирск, 2004 г., и на пятьдесят первых чтениях, посвященных памяти В. А. Догеля, ЗИН РАН, Санкт-Петербург, 2006 г.

Публикации Материалы диссертации отражены в 52 научных работах, общим объемом 290 страниц, в том числе в 29 статьях в центральных журналах, 5 из которых на английском языке. 13 статей написаны совместно с другими авторами.

Структура и объем работы Основной текст диссертации с иллюстрациями изложен на 320 страницах, состоит из введения, 10 глав, заключения, выводов и списка литературы.

Список литературы

содержит 364 названия, из них 217 на иностранных языках. Иллюстрации составляют 3 таблицы, 25 схем и 174 электроннограммы.

ВЫВОДЫ.

1. Обновление всех специализированных систем у цестод, на всех этапах жизненного цикла происходит за счет единого камбия, не имеющего четкой локализации в организме, и топографически не связанного с формируемыми системами, что является примитивным признаком тканевой организации. В то же время по кинетическим параметрам камбий подразделяется на субпопуляции, каждая из которых служит для дифференцировки и возобновления определенной гистологической структуры, что является прогрессивным признаком. Морфогенезы цестод демонстрируют неоднозначность последовательности событий. Для клеточных систем присуща полифункциональность. Таким образом, для цестод характерен процесс становления тканевой организации, т. е. они находятся на протканевом уровне развития.

2. Камбиальная система цестод характеризуется примитивными чертами и находится в процессе становления. Гистологический статус (протканевой уровень организации) можно охарактеризовать, как промежуточное состояние между дотканевыми организмами, клетки которых еще не вовлечены в интеграционные процессы, и животными с оформленным камбием и истинными тканями. Эти признаки свидетельствует о низком уровне организации цестод, как о первичном состоянии для группы, а не вторично упрощенном.

3. Цестоды, по зоологической классификации, относящиеся к «паренхимным» животным, не обладают специализированными паренхимными элементами. Синтез фибрилл межклеточного матрикса осуществляется на стадии раннего процеркоида тегументальными клетками, а затем на протяжении всего жизненного цикла мышечными клетками. В накоплении запасных питательных веществ принимают участие все специализированные системы, за исключением нервной. Все функции, выполняемые тканями внутренней среды у других.

Metazoa, у цестод осуществляются разными клеточными элементами, т. е. цестоды лишены специализированной соединительной ткани или тканей внутренней среды.

Паренхимная организация формируется на основе процесса метаплазии, когда мышечные, железистые, тегументальные элементы, и эпителий выделительной системы берут на себя функции тканей внутренней среды, не утрачивая при этом своих основных функций и типовых особенностей.

При переходе свободно плавающей личинки к паразитическому образу жизни происходит катастрофический метаморфоз, в ходе которого все специализированные системы онкосферы резорбируются и формируются de novo. Исключение представляет нервная система, которая в этот период активно растет, развивается и руководит процессом метаморфоза.

Закономерности морфогенетических процессов сходны на всем протяжении жизненного цикла, как во время метаморфоза, так и на заключительной стадии онтогенеза. Существует тенденция к формированию синцитиальных или симпластических образований. Наблюдается полный спектр возможных сценариев развития гистологических структур: клеточные и синцитиальные зачатки протоковформирование центральной полости аутофагией или расхождением клетокчастичная или полная элиминация ядерного материала, или отсутствие такого этапа в органогенезеучастие в процессе одной или двух популяций малодифференцированных клеток и т. д. Прослеживается внутригрупповое многообразие или морфологический спектр способов формирования гистологических структур.

Морфогенез протоков репродуктивной системы у высших цестод демонстрирует постепенное усложнение по сравнению с протеканием данного процесса у низших цестод: раннюю детерминированность цитодифференцировки всех клеточных слоев, входящих в состав полового зачаткачетко очерченную пространственную организацию каждого слоя зачатка с самого начального этапа морфогенезаэпителизацию стенок полового протока, когда эпителиальные клетки зачатков отличаются устойчиво воспроизводимой дифференцировкой своих поверхностей. Т. о. у цестод происходят эволюционные изменения морфогенезов: постепенный переход от примитивного сборочного или клеточного к более эволюционно продвинутому эпителиальному морфогенезу.

8. Нормальная симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент цестод, принимающая участие в пищеварительных процессах и обитающая в условиях избытка питательных веществ, состоит из бактерий традиционных размеров и многочисленных наноформ.

9. Протканевой уровень организации цестод обуславливает полифункциональность их клеточных систем, богатые формообразовательные потенции и служит морфологической основой для прогрессивной эволюции при адаптациях к паразитическому образу жизни.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

По устоявшимся представлениям цестоды принадлежат к паренхимным животным, то есть пространство между специализированными системами (выделительной, нервной и др.) плотно заполнено паренхимными клетками и фибриллами межклеточного матрикса. Однако электронно-микроскопические исследования показали, что основная масса паренхимы представляет собой переплетение многочисленных клеточных отростков, цитоплазма которых активно накапливает гликоген. Кроме того, было обнаружено, что основная часть отростков принадлежит мышечным клеткам (Conn, 1993). Специальные исследования паренхимы, проделанные нами на представителе низших цестод Triaenophorus nodulosus, показали, что на всех стадиях жизненного цикла специализированных паренхимных клеток у него нет. Функцию накопления питательных веществ и синтеза межклеточных фибрилл выполняют мышечные элементы, то есть берут на себя основную нагрузку тканей внутренней среды. Но в формирование «паренхимной организации» вовлечена не только мышечная система. Цитоплазматические отростки, накапливающие гликоген, образуют все системы паразита, за исключением нервной, то есть в накоплении гликогена принимают участие эпителий выделительных канальцев, цитоны тегумента и железистые клетки. В результате, паренхимная организация, по крайней мере некоторых цестод, формируется без участия специальных паренхимных клеток. Поэтому под термином «паренхима» для цестод мы предлагаем понимать совокупность межклеточного вещества и всех малодифференцированных и специализированных клеточных элементов. Существуют и более радикальные взгляды, что предок Plathelminthes был лишен каких-либо паренхимных клеток и тканей, и плоские черви не принадлежат к паренхимным животным (Ehlers, 1995).

Сложнее решить вопрос о наличии тканей внутренней среды: включают ли они только межклеточные структуры или клеточные элементы тоже? В отличие от большинства животных, обладающих специализированными клетками для синтеза межклеточного вещества и опорных структур — механоцитами, у цестод таких клеток не оказалось, также, как не оказалось специализированных клеток для накопления запасных питательных веществ. Получается, что доведенный до крайней степени проявления процесс метаплазии, то есть замены не существующих паренхимных клеток остальными клеточными элементами, приводит к отсутствию клеток, которые мы могли бы отнести к тканям внутренней среды.

Основное направление наших исследований касалось уровня тканевой организации цестод и состояния их камбиальной системы. Кроме общих структурных и функциональных особенностей фундаментальными характеристиками тканевой системы в процессе становления являются, во-первых, детерминированность генетического аппарата (к определенным направлениям дифференцировки) и, во-вторых, собственная камбиальность различных гистологических систем. Эти характеристики рассматриваются как исторически возникшие свойства тканевой системы на определенном этапе развития многоклеточное&trade-.

Цестоды, относящиеся к истинным Metazoa, вместе с тем обладают, так называемым, «вынесенным камбием», то есть их недифференцированные клетки расположены, в основном, в центральной части тела, и не образуют каких-либо отчетливых скоплений. Формирование гистологических структур происходит за счет миграции и агрегации недифференцированных клеток в области зачатка и частично за счет их деления непосредственно на месте. Как показали наши исследования по включению меченого предшественника синтеза ДНК, популяция стволовых клеток цестод, несмотря на то, что едина для всех специализированных элементов, в то же время состоит из субпопуляций клеток с собственными параметрами митотического цикла, например, для тегумента, матки, желточников и т. д. Этот факт позволяет трактовать существующую гистологическую ситуацию у цестод, как большой шаг в направлении формирования истинных тканей, обладающих не только общими функциями, но и собственным камбием. По существу собственный камбий с ограниченными потенциями к дифференцировке уже есть, только локализован не в составе гистологической структуры, а диффузно рассеян. В данном случае, можно говорить о протканевом уровне организации, переходном между примитивным дотканевым, (присущем, например вольвоксу, когда многоклеточное существо состоит из независимых клеток, не делающих попыток сформировать специализированные ткани), и истинно тканевым уровнем организации.

Закономерности протекания морфогенетических процессов, изменяющиеся в процессе эволюции, у животных в основании филогенетического древа имеют свои особенности. Сравнение этих закономерностей на разных этапах жизненного цикла цестод, в частности, процесса метаморфоза на стадии процеркоида и формирования мужских копулятивных аппаратов на стадии взрослого паразита, выявляет эволюционные тенденции изменения формообразовательных процессов. Изучение морфогенетических механизмов во время метаморфоза модельного вида Triaenophorus nodulosus, позволило на ультраструктурном уровне описать процессы дегенерации и резорбции всех провизорных систем, функционирующих до перехода к паразитическому образу жизни, и формирование этих систем заново, после проникновения в первого промежуточного хозяина. Исключение составила только нервная система, которая в исследуемый период активно развивается и интегрируется. Полученные данные позволяют говорить о существовании «катастрофического метаморфоза», протекающего под руководством формирующейся нервной системы. Поскольку плоские черви не обладают истинными экзокринными железами и циркуляторными системами, то активную гормоноподобную функцию способны выполнять нейросекреторные (или нейропептидные) субстанции, и нейросекрет должен активно влиять на ход метаморфоза.

Анализ формирования и развития зачатков на примере протоков и аппаратов репродуктивной системы у цестод из разных отрядов позволил обратить внимание на тот факт, что в пределах отряда Cyclophyllidea увеличивается разнообразие путей морфогенеза, в результате чего формирование половых протоков лишь частично напоминает процессы, наблюдаемые у низших цестод. Во-первых, наряду с формированием полостей по аутофагическому типу в клеточных многорядных тяжах, можно обнаружить другие разнообразные способы, например, расхождение клеток в центральной части зачатка. Во-вторых, закладка половых зачатков становится пространственно более высоко организована, то есть на самых ранних этапах зачатки состоят из оформленных внутреннего (будущего эпителиального) и внешних мышечных слоев. Необходимо заострить внимание на таком важном факте, что слои, составляющие зачаток, сохраняются на всем протяжении морфогенеза половой структуры, а эпителиальные клетки очень рано приобретают выраженную дифференцировку своих поверхностей на апикальные, базальные и боковые. В-третьих, формирование полости полового протока не сопровождается выселением и элиминацией ядер из эпителиального пласта и, по-видимому, по этой причине не происходит встраивание в эпителиальный пласт второй популяции малодифференцированных клеток. По нашему мнению, у высших цестод прослеживаются различные переходные этапы от примитивного клеточного морфогенеза к более эволюционно продвинутым эпителиальным разверткам, то есть на примере одного отряда цестод наблюдается эволюция механизма закладки и развития зачатков, прогрессивная эволюция морфогенезов.

В то же время формирование половых протоков у Lineolepis scutigera (Cyclophyllidea) демонстрирует неоднозначность путей морфогенеза при их эквифинальности, когда одна и та же структура образуется у разных особей популяции по клеточному или по синцитиальному типу. Данное явление характерно для многоклеточных с низким уровнем организации, обладающих высокой лабильностью гистологических структур и лишний раз свидетельствует о протканевом уровне организации цестод, у которых процессы дифференциации не столь строго детерминированы, как у высших многоклеточных животных.

Несмотря на протканевой уровень организации, диффузное состояние (единой для всего организма) камбиальной системы и примитивность морфогенетических процессов, цестоды являются процветающей группой, чему в немалой степени способствует тканевая пластичность, различные варианты которой мы постарались проанализировать.

Изучение взаимоотношений маточного эпителия с капсулами (или скорлупой) развивающихся зародышей позволило проследить ряд неоднократных переходов развития зародышей от получения энергии за счет эндогенных источников к питанию за счет материнского организма. Способы получения зародышами питательных веществ от эпителия матки также оказались весьма разнообразными. У Clestobothrium acheilognathi контакт временный, он ослабевает и полностью прекращается по мере склеротизации яйцевой скорлупы. У Nippotaenia mogurndae и Proteocephalus thymalli и ряда циклофиллидных цестод (Microsomacanthus sp., Lineolepis scutigera, Monocercus arionis) внедрение выростов яйцевой капсулы в маточный эпителий формирует картину плацентоподобных отношений. Различие в том, что в первом случае с эпителием матки контактируют только развивающиеся зародыши, которые впоследствии открепляются и лежат в полости матки свободно, а во втором случае между собой контактируют все элементы системы: ближайшие зародыши контактируют с эпителием матки и все остальные с непосредственными соседями, перераспределяя питательные вещества. У представителей рода Oochoristica (Cyclophyllidea) формирование паренхиматозных капсул или распад матки на капсулы, ограничивающие отдельных зародышей (Conn, Etges, 1984; Tkach, Swiderski, 1997), также являются вариантами тесных взаимоотношений с эпителием матки, который поставляет питательные вещества каждому зародышу «в индивидуальном порядке». Такой плацентоподобный тип питания, оказавшийся самым эффективным, возникал в процессе эволюции неоднократно, только на примере цестод из отряда Cyclophyllidea мы прослеживаем всевозможные попытки найти наиболее эффективную конструкцию. В результате переход к таким взаимоотношениям, которые обеспечивают развивающемуся потомству сразу и защиту и питание за счет родительского организма, позволили высшим цестодам совершить прорыв на сушу и вовлечь в свой жизненный цикл наземных хозяев.

Изучение тегумента не как покровного образования, а как пищеварительно-транспортной поверхности было отражено в ряде физиологических работ, из которых становится очевидной роль симбионтной микрофлоры цестод и ее вклад в пищеварительный процесс (Извекова, 2005 и др.). По нашим данным бактерии способны прикрепляться к специализированным микроструктурам (микроворсинкам на кишечнике рыб и микротрихиям на покровах паразитов) и между ними. Апикальные концы микроворсинок и микротрихий, наряду с представителями традиционных бактерий, колонизированы многочисленными нанобактериями, формирующими своеобразную биопленку на поверхности рассматриваемых пищеварительно-транспортных структур. Открытие симбионтной микрофлоры на покровах цестод позволяет говорить об еще одном примере тканевой пластичности цестод и еще одной стороне деятельности полифункционального тегумента. Компенсируя отсутствие кишечника, тегумент цестод не только выполняет функции всасывания питательных веществ, но и, наряду с кишечником хозяина, принимает активное участие в процессах пищеварения, а также оказался подходящим субстратом для колонизации бактериями. В результате сформировавшийся микробиоценоз хозяин-паразит-микрофлора) работает как единая система, поставляя в «общий котел» ферменты и витамины, и черпая из этого котла необходимые для каждого участника кооперации питательные вещества.

Подводя итоги вышесказанному, хочется еще раз подчеркнуть, что используя имеющийся в наличии небогатый клеточный состав и доступный гистологический арсенал, цестоды, находящиеся на протканевом уровне развития, решают возникающие перед организмом задачи. Многообразное использование гладкомышечной клетки (как стартовой структуры для развития полного эволюционного спектра сложно организованных мышечных систем, для формирования склеротизированных структур, для замены отсутствующих фибробластических и паренхимных элементов) — всевозможные варианты перехода к питанию зародышей за счет материнского организмаиспользование покровов в качестве пищеварительно-транспортной поверхности настолько, что истинная симбионтная микрофлора оказалась вовлеченной в процессы пищеварения макроорганизмов — все это примеры необыкновенной тканевой пластичности, присущей цестодам. Именно данная особенность является, по нашему мнению, морфологической основой для их прогрессивной эволюции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.В., Раева И. И. 1971. Мембранное (пристеночное)пищеварение у цестод // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. Т. 7. № 4. С. 375−379.
  2. .В. 1988. Особенности ультраструктуры паренхимыплероцеркоидов некоторых псевдофиллидных цестод // Биол. внутренних вод. № 79. С. 35−38.
  3. В.Н. 1925. Морфологическая проблема животныхструктур. (К критике некоторых из основных понятий гистологии) // Изв. Биол. Научно-исслед. Ин-та Перм. Ун-та. Т. 3, прилож. С. 1−74.
  4. .Н. 1991. Физиологические основы биологическогоформообразования. М.: Наука. 251 с.
  5. Н.М. 1986. Сравнительное морфофункциональноеисследование покровов некоторых низших цестод. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л.: ЛГУ. 15 с.
  6. Н.М. 1991. Ультраструктурная организация сколекса ипокровов стробилы Echinobothrium typus (Cestoda: Diphyllidea) // Морфологические основы филогенетики плоских червей / Тр. ЗИН АН СССР. Ленинград. Т. 241. С. 153−172.
  7. Н.М. 1991 а. Распределение рецепторных образований иособенности ультратонкого строения нервной системы у представителей трех отрядов низших цестод // Журнал общей биологии. Т. 52. № 4. С. 551−563.
  8. Н.М. 1996. Строение и способы формирования крючьев упредставителей трех отрядов цестод // Систематика, таксономия и фауна паразитов / Москва. Тез. Всероссийск. Конф. С. 29.
  9. Н.М. 1997. Строение нервной системы сколекса
  10. Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllydea) // Паразитология. Т. 31. № 3. С. 249−260.
  11. Н.М. 1997 а. Ультраструктурные аспекты взаимоотношенийнервной, мышечной и выделительной систем у цестод и амфилинид // Экологический мониторинг паразитов / С.-Пб. С. 138−140.
  12. Н.М. 2004. Нервная система цестод и амфилинид. Автореф.дисс. докт. биол. наук. М.: МГУ. 46 с.
  13. Н.М., Корнева Ж. В. 1999. Сенсорный аппарат и особенностиформирования нервной системы Triaenophorus nodulosus (Cestoda) в онтогенезе // Паразитология. Т. 33. № 1. С. 39−48.
  14. Н.М., Корнева Ж. В. 2006. Особенности онтогенетическогоразвития нервной системы цестод и амфилинид // Зоология беспозвоночных, (в печати).
  15. Н.М., Куперман Б. И. 1983. Морфофункциональнаядифференциация покровных тканей цестоды Acanthobothrium dujardini (Tetraphyllidea) // Паразитология. Т. 17. № 5. С. 382−390.
  16. Н.М., Сальникова М. М. 2002. Ультратонкое строениеглавных латеральных нервных стволов и сопутствующих элементов Triaenophorus nodulosus (Cestoda: Pseudophyllidea) // Цитология. Т. 44. № 7. С. 610−619.
  17. К.К., Миничев Ю. С. 1976. О гистолого-эмбриологическихособенностях низших Metazoa // Эволюционная морфология беспозвоночных животных. Л. С. 7−8.
  18. В.Л. 1998. Цитология и общая гистология. С-Пб: Сотис. 520 с.
  19. М.Б., Кудряшова Е. Б. 2000. О наннобактериях //
  20. . Т. 69. № 2. С. 163−174.
  21. Г. А., Давыдов В. Г., Куперман Б. И. 1982 а.
  22. Морфофизиологические особенности водно-солевого обмена у некоторых псевдофиллидных цестод // Паразитология. Т. 16. № 3. С. 188−193.
  23. Г. А., Давыдов В. Г., Куперман Б. И. 1982 б.
  24. Морфофизиологическое исследование механизмов адаптации кразличным соленостям у псевдофиллидных цестод // Паразитология. Т. 16. № 5. С. 337−383.
  25. Г. Электронная гистохимия // М., «Мир», 1974. 488с.
  26. К.В., Добровольский А. А. 1987. Гермафродитноепоколение трематод. JI. Наука. 192 с.
  27. К.В., Добровольский А. А. 1998. Происхождение иэволюция жизненных циклов трематод. С-Пб: Наука. 404 с.
  28. А.К. 1979. Морфогенез половой системы Passerelepis crenata
  29. Cestoidea: Hymenolepididae) // Паразитология. Т. 13. № 6. С. 611−619.
  30. Т.А. 1968. Трематоды: Их жизненные циклы, биология иэволюция. Л. 411 с.
  31. Е.Н., Чага О. Ю. 1990. Сравнительная гистология тканейвнутренней среды с основами иммунологии. Л.: Изд-во Ленингр. унта. 320 с.
  32. В.Д. 1996. Становление основных признаков организации ионтогенеза ленточных червей (Cestoda). I. Архитектоника и проморфология свободноживущей расселительной личинки (гексаканта) цестод // Зоол. журн. Т. 75. № 6. С. 820−829.
  33. В.Д. 1996 а. Становление основных признаков организации ионтогенеза ленточных червей (Cestoda). Гомология церкомера цестод и возникновение интеркалярной паразитической личинки церкоида // Зоол. журн. Т. 75. № 7. С. 961−971.
  34. В.Д. 1996 b. Становление основных признаков организации ионтогенеза ленточных червей (Cestoda). III. Происхождение метамерии и метагенеза Eucestoda // Зоол. Журн. Т. 75. № 8. С. 1040— 1050.
  35. В.Д. 1997. Возникновение и гомология хоботкового аппарата
  36. Trypanorhyncha (Plathelminthes, Cestoda) // Зоол. журн. Т. 7610. № 4. С. 402−408.
  37. В.Д. 1998. Морфогенез метацестод бесполого поколенияленточных червей (Eucestoda) // Теоретические и прикладные проблемы гельминтологии.
  38. В.Д. 2000. Акселерация морфогенеза сколекса в филогенезеленточных червей (Plathelminthes, Cestoda, Eucestoda) // Зоол. Журн. Т. 79. № 11. С. 1253−1259.
  39. В.Г. 1979. Гистохимическое изучение псевдофиллидныхцестод // Тр. Ин-та биол. внутр. вод АН СССР / JL: Наука. № 38/41. С. 189−200.
  40. В.Г. 1991. К вопросу о структуре, функции и происхождениитегумента у представителей Cercomeromorpha // Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. Л.: Наука. Т. 41. С. 138−152.
  41. В.Г., Колесникова Г. А. 1992. Дифференцировка протоковполовой системы Caryophyllaeus laticeps (Cestoda, Caryophyllidea) // Биол. внутр. вод: Информ. Бюлл. ИБВВ АН СССР. Т. 94. С. 55−61.
  42. В.Г., Корнева Ж. В. 1997. Морфогенез желез проникновения у
  43. Triaenophorus nodulosus (Cestoda- Pseudophyllidea) // Паразитология. Т. 31. № 3. С. 231−238.
  44. В.Г., Корнева Ж. В. 2002. Строение копулятивного аппарата
  45. Sobolevicanthus gracilis (Cestoda: Cyclophyllidea) // Паразитология. Т. 36. № 3. С. 224−230.
  46. В.Г., Куперман Б. И. 1979. Структура фронтальных желез упредставителей трех отрядов цестод // Тр. Ин-та Биологии Внутренних вод АН СССР. Л. Наука. № 38/41. С. 177−188.
  47. В.Г., МикряковВ.Р. 1988. Адаптивные структуры покрововтела некоторых цестод, связанные с защитой паразитов от влияния организма хозяина // Иммунологические и биохимические аспекты взаимоотношений между паразитом и хозяином. М. Наука. С. 88−100.
  48. В.Г., Поддубная Л. Г. 1988. Функциональная морфологияфронтальных и маточных желез у представителей цестод отряда Caryophyllidea // Паразитология. Т. 22. № 6. С. 449−456.
  49. В.Г., Поддубная Л. Г., Колесникова Г. А. 1994.
  50. Ультраструктура протоков половой системы Caryophyllaeus laticeps 11 Паразитология. Т. 28. № 6. С. 501−509.
  51. В .Г., Поддубная Л. Г., Куперман Б. И. 1997. Ультраструктуранекоторых систем органов Diplocotyle olrikii (Cestoda: Cyathocephalata) в связи с особенностями его жизненного цикла // Паразитология. Т. 31. № 2. С. 132−141.
  52. В .Г., Поспехова Н. А., Юрлова Н. И. 1990. Ультраструктурнаяорганизация сколекса и покровов стробилы Gastrotaenia dogieli // Паразитология. Т. 24. № 3. С. 207−215.
  53. В.А. 1928. Онтогенез и филогенез у животных // Природа. № 1.1. С. 63−79.
  54. А.К. 1994. Теория зародышевых листков: дискуссионныеаспекты // Онтогенез. Т. 25. № 6. С. 69−76.
  55. А.К., Дондуа Т. К. 1964. К анализу митотических циклов //
  56. Исследование клеточных циклов и метаболизма нуклеиновых кислот при дифференциации клеток. М.- Л.: Наука. С. 5−36.
  57. И.М. 1983. Авторадиографическое исследованиепищеварительной паренхимы Convoluta convoluta II Цитология. Т. 25. № И. С. 1270−1277.
  58. И.М. 1991. Камбиальность эпидермиса у турбеллярий // Тр.
  59. Зоол. ин-та АН СССР. Т. 241. С. 53−87.
  60. И.М. 1987. Исследование физиологической регенерацииэпидермиса у поликлады Notoplana humilis с помощью метода тимидиновой авторадиографии // Тр. Зоол. Ин-та АН СССР. Т. 167. С. 90−96.
  61. И.М. 2003. О митозах у зародышей и личинокветвистокишечных турбеллярий Cycloporus japonicus и Notoplana humilis (Plathelminthes) с различным типом развития // Зоол. Журн. Т. 82. № 11. С. 1292−1299.
  62. М.Н. 1982. Паразитические черви класса Amphilinida
  63. Plathelminthes). Л.- Наука. 100 с.
  64. А.В. 2005. Сравнительная эмбриология губок. СПб.: Изд.1. С-Петерб. Ун-та. 304с.
  65. А.В., Короткова Г. П. 1999. О причинах своеобразияонтогенеза у губок // Журн. Общ. Биол. Т. 60. № 3. С. 318−332.
  66. А.А. 1953. Очерки эволюционной гистологии крови исоединительной ткани // Избранные труды. Т. 4. М-Л. АН СССР. 717 с.
  67. А. А. 1985. Основы сравнительной гистологии. Л.: Изд-во ЛГУ.400 с.
  68. А. А. 2000. Сравнительная гистология. С-Пб: Изд. С-ПбГУ.520 с.
  69. Иванова-Казас О.М. 1995. Эволюционная эмбриология животных. С1. Пб.: Наука. 565 с.
  70. Г. И. 2003. Активность протеаз микрофлоры пищеварительнотранспортных поверхностей кишечника щуки и паразитирующего в нем Triaenophorus nodulosus (Pallas, 1781) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Биология внутренних вод. № 3. С. 82−87.
  71. Г. И. 2005. Активность карбогидраз симбионтноймикрофлоры и их роль в процессах пищеварения у рыб и паразитирующих в них цестод (на примере щуки и Triaenophorus nodulosus) II Журнал эволюционной биохимии и физиологии. Т. 41. № 4. С. 325−331.
  72. Г. И., Лаптева Н. А. 2002. Микрофлора пищеварительнотранспортных поверхностей кишечника щуки и паразитирующего внем Triaenophorus nodulosus (Pallas, 1781) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Биология внутренних вод. № 4. С. 75−79.
  73. Г. И., Лаптева Н. А. 2004. Микрофлора, ассоциированная спищеварительно-транспортными поверхностями рыб и паразитирующих в них цестод // Экология. № 3. С. 205−209.
  74. В.А. 1986. Сравнительная морфология и цитохимия железпроникновения некоторых циклофиллидей // Паразитология. Т. 20. № 2. С. 126−131.
  75. В.А., Плужников Л. Т. 1983. Цитоморфология зрелых яиццестоды Fimbriaria fasciolaris (Cestoidea, Hymenolepididae) // Паразитология. Т. 17. № 6. С. 430−435.
  76. Е.Е. 1989. Строение паренхимы Udonella murmanica
  77. Turbellaria, Udonellida) и основные тенденции в эволюции соединительной ткани плоских червей // Паразитол. Сб. Зоол. ин-та АН СССР. № 36. С. 161−179.
  78. Е.Е. 1994. Ультраструктура паренхимы и экстраклеточногоматрикса Passerilepis crenata (Cestoda: Cyclophyllidea) // Паразитология. Т. 28. № 2. С. 119−123.
  79. Е.Е. 1999. Морфогенез крючьев и ультраструктура железпроникновения в онкосферах Passerelepis crenata (Cestoda: Cyclophyllidea) // Паразитология. Т. 33. № 2. С. 118−124.
  80. .В. 1994. Клеточный состав и ультраструктурнаяорганизация корацидия Triaenophorus nodulosus (Cestoda- Pseudophyllidea) // Паразитология. Т. 28. № 4. С. 276−282.
  81. .В. 1995. Ультраструктурная организация паренхимынекоторых цестод: Автореф. дис. канд. биол. наук. С-Пб. 16 с.
  82. .В. 1998. Паренхимная организация у процеркоида
  83. Triaenophorus nodulosus // «Проблемы цестодологии» Сб. Науч. Тр. (памяти М. Н. Дубининой.) С-Пб. С. 59−68.
  84. .В. 2001. Клеточный состав паренхимы и межклеточныйматрикс в онтогенезе Triaenophorus nodulosus (Cestoda) // Известия АН, серия биол. № 1. С. 11−22.
  85. .В. 2002 а. Ультраструктурная организация репродуктивнойсистемы Triaenophorus nodulosus (Cestoda) // Зоол. журн. Т. 81. № 12. С. 1432−1438.
  86. .В. 2002 б. Тонкая структура половой системы Nippotaeniamogurndae (Cestoda: Nippotaeniidea) // Зоол. журн. Т. 81. № 3. С. 266 275.
  87. .В. 2003. Цитодифференцировка копулятивных аппаратов унизших цестод // Биология внутренних вод, № 1. С. 9−17.
  88. .В. 2004. Ультраструктурная организация бактерий, ассоциированных с тегументом цестоды Triaenophorus nodulosus и кишечником ее хозяина щуки // Тез. Докл. Всеросс. Конф. Новосибирск. С. 384.
  89. .В. 2005. Ультраструктурная организация и морфогенезмужского копулятивного аппарата у Microsomacanthus sp. (Cestoda, Cyclophyllidea) // Зоол. журн. Т. 84. № 3. С. 291−300.
  90. .В. 2005 а. Взаимоотношения плацентарного типа иэволюционные тенденции развития матки у цестод // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. Т. 41. № 5. С. 442−449.
  91. .В., Бисерова Н. М. 2005. Морфофункциональныепреобразования гладкой мускулатуры в прикрепительных и копулятивных аппаратах ленточных червей (Plathelminthes, Cestoda) // Успехи соврем, биол. Т. 125. № 3. С. 318−327.
  92. .В., Давыдов В. Г. 1995. Изучение цитодифференцировки у
  93. Triaenophorus nodulosus II Паразитология. Т. 29. № 5. С. 390−397.
  94. .В., Давыдов В. Г. 1998. Уникальная модификация гладкоймускулатуры Sobolevicanthus sp. (Cestoda) // Цитология. Т. 40. № 1. С. 10−13.
  95. .В., Давыдов В. Г. 2001. Ультраструктура мужской половойсистемы у трех протеоцефалидных цестод // Зоол. журн. Т. 80. № 8. С. 921−928.
  96. .В., Давыдов В. Г. 2001 а. Ультраструктура женской половойсистемы Gangesia parasiluri (Cestoda, Proteocephalidea, Proteocephalidae) // Зоол. журн. Т. 80. № 2. С. 131−144.
  97. .В., Давыдов В. Г., Бисерова Н. М. 1998. Адаптационныепреобразования мышечных клеток прикрепительных аппаратов цестод // Паразитология. Т. 32. № 2. С. 193−200.
  98. .В., Давыдов В. Г., Поддубная Л. Г. 1999. Аутофагия впроцессе цитодифференцировки у цестод // Цитология. Т. 41. № 12. С. 1048−1052.
  99. .В., Плотников А. О. 2006. Симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и кишечник его хозяина щуки // Паразитология. (В печати).
  100. .В., Плотников А. О. 2006 а. Симбионтная микрофлора, колонизирующая тегумент протеоцефалидных цестод и кишечник их хозяев рыб // Паразитология. (В печати).
  101. .В., Поддубная Л. Г. 1999. Адаптивное значение сменыпокровов у процеркоидов кариофиллидных и псевдофиллидных цестод // Паразитология. Т. 33. № 2. С. 97−103.
  102. Г. П. 1981. Общая характеристика организации губок. //
  103. Морфогенезы у губок. Труды Биол. Науч. Иссл. Ин-та. № 33. С. 5−51.
  104. Л.И. 1977. Взаимодействие генов в развитии. М. Наука. 280 с.
  105. Е.А., Куперман Б. И. 1977. Развитие нервного аппарата
  106. Triaenophorus nodulosus (Cestoidea, Pseudophyllidea) в онтогенезе // Паразитология. Т. 11. № 3. С. 252−259.
  107. Е.А., Куперман Б. И. 1977. Развитие нервного аппарата
  108. Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea) в онтогенезе // Паразитология. Т. 11. № 3. С. 252−259.
  109. Г. П. 1999. Морфо-функциональные адаптации цестод вонто-филогенезе // Сб. науч. тр. Всерос. Конф. Москва. С. 45−52.
  110. В.В., Извекова Г. И., Куперман Б. И. 2000. Особенностифизиологии питания цестод и их хозяев рыб // Успехи современной биологии. Т. 120. № 4. С. 384−394.
  111. В.В., Куперман Б. И. 1983. Сравнительная характеристикамембранного пищеварения у цестод и их хозяев рыб // Паразитология. Т. 17. № 6. С. 436−442.
  112. .И. 1973. Ленточные черви рода Triaenophorus — паразитырыб. Л. Наука. 208 с.
  113. .И. 1988. Функциональная морфология низших цестод. Л.:1. Наука. 167 с.
  114. .И., Давыдов В. Г., Поддубная Л.Г.,. Бисерова Н. М. 1985.
  115. Морфофункциональные основы адаптации цестод к организму хозяина. VIII Всесоюзное совещание по паразитам и болезням рыб. Л. Наука. С. 78−80.
  116. .И., Кузьмина В. В. 1984. Ультраструктура кишечногоэпителия щуки Esox lucius L. (Esocidae) // Вопросы ихтиологии. Т. 24. № 3. С. 431−437.
  117. Г. Ф. Биометрия // М. Высш. школа. 1980. 293 с.
  118. В.Н., Вербицкас Ю., Янкявичус К. К., Лясаускене Л.,
  119. В., Тряпшене О., Юзоленене Ю., Ястюгинене Р., Бабянскас М., Янкаускене Р. 1989. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас. 191 с.
  120. X. 1980. Основы гистохимии. М.- «Мир». 343 с.
  121. Ю.В. 1987. Проблема параллелизмов и морфологическаярадиация // Эволюционные идеи в гистологии и эмбриологии / Тр. Ленингр. о-ва естествоиспыт. Т. 86. № 1. С. 195−203.
  122. Ю.В. 1991. Методы и закономерности эволюционнойморфологии // Современная эволюционная морфология. Киев. Наукова думка. С. 33−55.
  123. Ю.В. 2004. Эволюционное значение морфогенетическихмеханизмов // Биология моря. Т. 30. № 6. С. 415−422.
  124. Ю.В. 2004 а. Дарвинизм и номогенез // Фундаментальныезоологические исследования. Теория и методы. / Москва-Санкт-Петербург. Товарищество научных изданий КМК. 318 с.
  125. Ю.В. 2005. К морфологической характеристике цестод //
  126. Проблемы цестодологии. Сб. науч. тр. Вып. 3. С-Пб. Изд-во ЗИН РАН. С. 187−206.
  127. Ю.С. 1982. О механизмах морфогенезов низшихбеспозвоночных // Проблемы развития морфологии животных / М.: Наука. С. 163−172.
  128. Т.О. 1995. Исследование клеток и вещества мезоглеи на разныхстадиях жизненного цикла Aurelia aurita (Cnidaria, Scyphozoa): Автореф. дис. канд. биол. наук. С-Пб. 16 с.
  129. В.П. 1983. Ультраструктура паренхиматозных клетокхвостового придатка личинок гименолепидад // Паразитология. Т. 17. № 6. С. 443−447.
  130. В.П. 2004. Цитоморфология скребней. М.: ГЕОС. 234 с.
  131. Плужников J1.T. 1991. Цитоморфологические проявления химическойкоммуникации у цестод. // Простые нервные системы: Регион, конф. Междунар. о-ва нейробиол. беспозвоночных. Минск. С. 75.
  132. Плужников J1.T., Краснощеков Г. П., Поспехов В. В. 1986.
  133. Ультраструктура рецепторных окончаний циклофиллидей (Cestoda, Cyclophyllidea). // Паразитология. Т. 20. № 6. С. 441−447.
  134. И.М. 1999. Тонкое строение покровов церкарий иразвивающихся метацеркарий Diplostomum chromatophorum (Trematoda: Diplostomidae) // Паразитология. Т. 33. № 6. С. 507−519.
  135. И.М., Добровольский А. А. 2001. Развитие мышечныхэлементов кожно-мускульного мешка метацеркарий Diplostomum chromatophorum (Trematoda: Diplostomatidae) // Паразитология. Т. 35. № 6. С. 531−539.
  136. Л.Г. 1988. Ультратонкое строение некоторыхкариофиллидных цестод // Автореф. дис. канд. биол. наук. М. 24 с.
  137. Л.Г. 1995. Особенности генезиса покровов процеркоидовкариофиллидных цестод // Паразитология. Т. 29. № 1. С. 13−18.
  138. Л.Г. 2002. Ультраструктурная организация протоковмужской половой системы Diphyllobothrium latum (Cestoda, Pseudophyllidea) // Зоол. журн. Т. 81. № 4. С. 394−405.
  139. Л.Г. 2002 а. Филогения и происхождение кариофиллидныхцестод (Caryophyllidea) в связи с особенностями их ультраструктурной организации // Успехи совр. биол. Т. 122. № 3. С. 239−248.
  140. Л.Г. 2002 6. Ультраструктура протоков половой системы
  141. Diphyllobothrium latum (Cestoda, Pseudophyllidea): протоки женских репродуктивных органов // Паразитология. Т. 36. № 1. С. 79−87.
  142. Л.Г. 2003. Ультраструктурная организация репродуктивныхорганов и протоков прогенетического вида Archigetes sieboldi (Cestoda, Caryophyllidea) // Зоол. журн. Т. 82. № 9. С. 1038−1050.
  143. Л.Г. 2003 а. Строение половой системы амфикотилиднойцестоды Eubothrium rugosum (Cestoda, Pseudophyllidea) в зависимости от условий обитания // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. Т. 39. № 3. С. 271−280.
  144. Л.Г. 2005. Электронно-микроскопическое исследованиемикрофлоры, ассоциированной с тегументом цестоды Eubothriumrugosum, паразита кишечника налима // Паразитология. Т. 39. № 4. С. 293−298.
  145. Л.Г., Давыдов В. Г., Куперман Б. И. 1986.
  146. Морфофункциональное изучение некоторых представителей отряда Caryophyllidea (Cestoda) // Тр. Ин-та биологии внутренних вод АН СССР / Л., Наука. Вып. 53. С. 208−217.
  147. С.Е. 1994. К дискуссии о специализации, прогрессе ирегрессе у эндопаразитов // Паразитология. Т. 28. № 3. С. 245−247.
  148. В.В., Краснощеков Г. П. 1992. Формированиечувствительных окончаний у цестод // Паразитология. Т. 26. № 1. С. 82−84.
  149. Н.А. 2001. Морфо-функциональные особенности сколексациклофиллидей. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 23 с.
  150. С.В., Пронин Н. М. 1982. Строение пищеварительного трактащуки Esox lucius L. (Esocidae) в норме и при заражении цестодой Triaenophorus nodulosus (Pallas, 1781) (Cestoda, Triaenophoridae) // Вопросы ихтиологии. Т. 22, вып. 4. С. 641−648.
  151. С.В., Пронин Н. М. 1988. Взаимоотношения в системахгельминты рыбы. М.: Наука. 177с.
  152. Ю.А. 1979. Растровая электронная микроскопиянормальных и опухолевых клеток. М. Медицина. 151с.
  153. Г. А. 2005. Основы структурной гистологии.
  154. Пространственная организация эпителиев. С-Пб.: Наука. 375с.
  155. М.Е., Астапович Н. И., Буряко И. А. 1999. Особенности ростаи продукции внеклеточных протеиназ Lactobacillus plantarum ИМ-9/138 // Микробиология. Т. 68. № 4. С. 449−452.
  156. Л.Н. 1986. Природа и происхождение губок // Систематикапростейших и их филогенетические связи с низшими эукариотами. Тр. Зоол. Ин-та Ан СССР. Т. 144. С. 94−112.
  157. З.П., Ткач В. В. 1998. Сравнительная ультраструктура идифференциация яйцезащитных образований паренхиматозного происхождения у некоторых циклофиллидных цестод // Проблемы цестодологии. / Ред. А. К. Галкин, Е. В. Дубинина. С-Пб. С. 116−128.
  158. А.А. 1988. О высших таксонах церкомероморфных плоскихчервей // Изв. АН МолдССР. Серия биол. и хим. наук. № 2. С. 3−6.
  159. А.А. 1989. Обзор зоологической системы ленточныхгельминтов // Изв. АН МолдССР Серия биол. и хим. наук. № 1. С. 5264.
  160. Н.Б., Густафссон М.К.С. 2003. Оксид азота новоенейрональное сигнальное вещество у гельминтов / Тез. «Проблемы современной паразитологии». Петрозаводск. С. 131−132.
  161. В.А., Куперман Б. А. 1967. Ультратонкое строение наружныхпокровов корацидия Triaenophorus nodulosus (Pall) // Паразитология. Т. 1. Вып. 2. С. 124−130.
  162. В.А., Куперман Б. И. 1968. Ультратонкое строение кутикулыи субкутикулярного слоя процеркоида, плероцеркоида и взрослых особей Triaenophorus nodulosus (Pall.) // Паразитология. Т. 2. № 1. С. 42−49.
  163. В.А., Куперман Б. И. 1972. Возникновение и формированиемикротрихий у цестод на примере Triaenophorus nodulosus по электронно-микроскопическим данным // Докл. АН СССР. Т.207 №.3 С.757−759.
  164. В.А., Куперман Б. И. 1973. Электронномикроскопическоеисследование процессов возникновения и формирования покровов у цестод на примере Triaenophorus nodulosus II Паразитология. Т. 7. № 4. С. 339−348.
  165. A.M. 1985. Эволюция пищеварения и принципы эволюциифункций. JL: Наука. 544 с.
  166. A.M., Кузьмина В. В. 1993. Пищеварительные процессы иадаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат. 238 с.
  167. . 1975. Электронная микроскопия для начинающих. Изд.1. Мир". 324с.
  168. Хэм А., Кормак Д. 1983. Мышечная ткань. Гистология. // Т. 3. М.: Мир.1. С. 241−291.
  169. О.В., Горская Е. М., Рубан С. З. 1982. Микробиологические ииммунологические основы гнотобиологии. М.: Медицина. 160с.
  170. В.Г. 2003. Морфогенез и эволюция. Товарищество научныхизданий КМК. Москва. 360 с.
  171. Ю.В., Чураев М. Ю., Продеус Т. В., Гордеева Л. М. 1984.
  172. Электронно-цитохимическое выявление активности кислой фосфатазы у Entamoeba histolotica и сопутствующих ей бактерий кишечной флоры // Матер. Всесоюз. Совещ. «Цитология микроорганизмов». Пущино. С. 92−93.
  173. Aho J.M., Uglem G.L., Moore J.P., Larson O.R. 1991. Bacteria associatedwith the tegument of Clinostomum marginatum (Digenea) // J. Parasitol. V. 77. № 5. P. 784−786.
  174. C., Bridges J.F., Hoole D. 1983. Infections in the vertebrate host //
  175. Biology of Eucestoda. V. 2. P. 449−538.
  176. P.F., Gupta B.C. 1988. Immunocytochemical localization ofregulatory peptides in six species of trematodes // Сотр. Biochem. Physiol. V. 91C. P. 565−570.
  177. J., Salo E., Auladell C. 1989. Regeneration and pattern formation inplanaria. III. Evidence that neoblasts are totipotent cells and the source of blastema cells // Development. V. 107. P. 77−86.
  178. P., White K. 2000. Regulation and execution of apoptosis during
  179. Drosophila development // Dev. Dyn. V. 218. P. 68−79.
  180. Berrada-Rkhami О., Gabrion С. 1990. The fine structure of the embryonicenvelopes before and after hatching in bothriocephalids: physiological and ecological significance // Parasitol. Res. V. 76. P. 251−262.
  181. I., Smith K. 1985. An ultrastructural study of the cirrus andvagina of Phyllobothrium vagans II Z. Parasitenkd. V. 71. № 5. P. 609 616.
  182. N.M., Scichov B.A., Zhukova N. 1991. Ultrastructural andhistochemical studies of the nervous system of the scolex of adult Triaenophorus nodulosus (Cestoda: Pseudophyllidea) // Simple nervous system. Minsk, p. 11.
  183. R.I., Roberts L.S. 1971. Developmental physiology of cestodes.
  184. Cytological characteristics of the germinative region of Hymenolepis diminuta II J. Parasitol. Vol. 57. № 2. P. 267−277.
  185. C.H., Forssten I., Gustafsson M., Wikgren B.J. 1971. Cellularcomposition of plerocercoids of Diphyllobothrium dendriticum (Cestoda) // Acta Zool. Fennica. № 132. P. 1−25.
  186. BratenT. 1968. The fine structure of the tegument of Diphyllobothriumlatum. A comparison of the plerocercoid and adult stages // Z. Parasitenkd. Bd 30. № 1.S. 104−112.
  187. H.V. 1969. Planarian regeneration. London: Pergamon-Press.1. Oxford.
  188. J. 1986. Ultrastructural investigations on the differentiation ofgenital hard structures in free-living platyhelmiths and their phylogenetic significance//Hydrobiol. V. 132. P. 151−163.
  189. J.C. 1963. Seasonal occurrence and maturation of Triaenophorusnodulosus (Pallas, 1781) (Cestoda: Pseudophyllidea) in the pike Esox lucius L. ofLlyn Tegid. //Parasitol. V. 53. № 3−4. P. 419−433.
  190. Chew M.W.K. 1983. Taenia crassiceps: ultrastructural observations on theoncosphere and associated structures // J. Helminthol. V. 57. № 2. P. 101 113.
  191. M., Wilm В., Hobmayer E., Bottger A., David C.N. 1999.1.entification of caspases and apoptosis in the simple metazoan Hydra // Curr. Biol. V. 9. P. 959−962.
  192. W.K. 1968. Electron microscope studies of the muscle and hooksystems of hatched oncospheres of Hymenolepis citelli McLeod, 1933 // J. Parasitol. V. 54. № 1. P. 74−88.
  193. W.K. 1969. The cellular organization of hatched oncospheres of
  194. Hymenolepis citelli (Cestoda, Cyclophyllidea) // J. Parasitol. V. 5. № 1. P. 149−166.
  195. Collin W.K. Electron microscopy of postembryonic stages of the tapeworm,
  196. Hymenolepis citelli II J. Parasitol. 1970. Vol.56, № 6. P. 1159−1170.
  197. D.B. 1985. Fine structure of the embryonic envelopes of Oochoristicaanolis (Cestoda: Linstowiidae) // Z. Parasitenkd. V. 71. P. 639−648.
  198. D.B. 1985 a. Scanning electron microscopy and histochemistry ofembryonic envelopes of the porcupine tapeworm, Monoecocestus americanus (Cyclophyllidea: Anoplocephalidae) // Canad J. of Zool. V. 63. N5. P. 1194−1198.
  199. D.B. 1987. Fine structure, development, and senescence of the uterineepithelium of Mesocestoides lineatus II Trans. Amer. Microsc. soc. V. 106. № 1. P. 63−73.
  200. D.B. 1988. The role of cellular parenchyma and extracellular matrix inthe histogenesis of the paruterine organ of Mesocestoides lineatus (Platyhelminthes: Cestoda) // J. Morphol. V. 197. P. 303−314.
  201. D.B. 1988 a. Development of the embryonic envelopes of
  202. Mesocestoides lineatus (Cestoda: Cyclophyllidea) // International Journal of Invertebrate Reproduction and Development. V. 14. P. 119−130.
  203. D.B. 1993. The biology of flatworms (Platyhelminthes): Parenchymacells and extracellular matrices // Trans. Am. Microsc. Soc. V. 112. № 4. P. 241−261.
  204. D.B. 1993 a. Ultrastructure of the gravid uterus of Hymenolepisdiminuta (Platyhelminthes: Cestoda) // J. Parasitol. V. 79. № 4. P. 583 590.
  205. D.B. 1999. Ultrastructure of the embryonic envelopes and associatedmaternal structures of Distoichometra bufonis (Platyhelminthes, Cestoidea, Nematotaeniidae) I I Acta Parasitol. V. 44. N 1. P. 4−10.
  206. D.B., Etges F.J. 1984. Fine structure and histochemistry of theparenchyma and uterine egg capsules of Oochoristica anolis (Cestoda: Linstowiidae) // Z. Parasitenkd. V. 70. № 6. P. 769−779.
  207. D.B., Etges F.J., Sidner R.A. 1984. Fine structure of the gravidparuterine organ and embryonic envelopes of Mesocestoides lineatus (Cestoda) // J. Parasitol. V. 70. № 1. P. 68−77.
  208. D.B., Forman L.A. 1993. Morphology and fine structure of the graviduterus of three hymenolepidid tapeworm species (Platyhelminthes: Cestoda) // Invertebrate Reproduction and Development. V. 23. № 2−3. P. 95−103.
  209. D.V., Rocco L.J. 1989. Fine structure of the cellular parenchyma andextracellular matrix of Ophiotaenia loennbergi (Proteocephalidea) // Acta Zool. (Stockh). V. 70. № 2. P. 105−110.
  210. A., Niewiadomska K. 1997. The muscular system of the cercaria of
  211. Diplostomum pseudospathaceum Niew., 1984 (Digenea): A phalloidinrhodamine fluorescence and ТЕМ study // Acta Parasitologica. V. 32. № 4. P. 199−218.
  212. V.G., Korneva J.V. 2000. Differentiation and structure of a uterusfor Nippotaenia mogurndae Yamaguti et Miato, 1940 (Cestoda: Nippotaeniidea) // Helmithologia. V. 37. № 2. P. 77−82.
  213. V.G., Korneva J.V. 2000 a. Differentiation and placental-like organization of the uterus for Nippotaenia mogurndae II Bulletin of the Scandinavian Society for Parasitology. V. 10. N 2. P. 104.
  214. Davydov V.G., Korneva J.V. and Kuperman B.I. 1995. The development ofthe tegument in ontogenesis of Triaenophorus nodulosus (Cestoda: Pseudophyllidea) // Folia Parasitologic^ V. 42. P. 269−279.
  215. V.G., Kuperman B.I. 1993. The ultrastructure of the tegument andthe peculiarities of the biology of Amphilina foliacea adult (Plathelminthes, Amphilinidea) // Folia Parasitologica. V. 40. P. 13−22.
  216. De Haan G. 2002. Hepatopoetic stem cells: selfrenewing or aging? // Cells
  217. Tissues Organs. V. 171. P. 27−37.
  218. Doe D.A. 1982. Ultrastructure of copulatory organs in Turbellaria //
  219. . V. 101. P. 39−59.
  220. Doe D.A. 1986. Ultrastructure of the copulatory stylet and accessory spinesin Haplopharynx quadristimulus (Turbellaria) // Hydrobiology. V. 132. P. 157−163.
  221. I.M. 1986. Physiological regeneration of the digestiveparechyma in Convoluta convoluta and Oxyposthia praedator (Turbellaria, Acoela) //Hydrobiologia. V. 132. P. 189−193.
  222. В., Ehlers U. 1980. Struktur und Differezierung penialer Hartgebildevon Carenscoilia bidentata Sopott (Turbellaria, Proseriata) // Zoomorphology. V. 95. S. 159−167.
  223. U. 1985. Phylogenetic relationships within the Platyhelminthes // Theorigins and relationships of lower invertebrates / The Systematics Association, S. V. 28. P. 143−158.
  224. U. 1995. The basic organization of the Plathelminthes //
  225. . V. 305. № 1−3. P. 21−26.
  226. I., Halton D.W. 1991. Neuropeptides in Platyhelminthes //
  227. . V. 102. S77-S92.
  228. L., Threadgold L.T. 1981. Hymenolepis nana: the fine structureof the «penetration gland» and nerve cells within the oncosphere // Parasitology. V. 82. № 3. P. 445−458.
  229. A.G. 1999. Programmed cell death in C. elegans //Cancer. Metast.1. Rev. V. 18. P. 285−294.
  230. R.S. 1973. Ontogeny of cestodes and its bearing on their phylogenyand systematics // Adv. Parasitol. (B. Dawes, ed) / Academic press, London and New York. V. 11. P. 481−557.
  231. Т., Miyazato Т., Okamoto K., Nakai Y. 1977. The fine structure ofthe hatched oncospheres of Hymenolepis diminuta II Jap. J. Parasitol. V. 26. № 2. P. 49−62.
  232. K.V., Dobrovolskij A.A. 2003. The Biology and Evolution of
  233. Trematodes // An Essay on the Biology, Morphology, Life Cycles, Transmission, and Evolution of Digenetic Trematodes / Boston, Dordrecht, London: Kluwer Academic Publ. 620 pp.
  234. K.V., Malkova I.I. 1993. Development of the alimentary tractduring morphogenesis of the metacercariae of Levinseniella brachysoma II J. Helminthol. V. 67. P. 87−94.
  235. Garrone R 1981. The evolution of connective tissue. Phylogeneticdistribution and modifications during development // Progr. Clin. Biol. Res. V. 54. P. 141−149.
  236. Gevaerts H., Moens J.B., Martens Els. E., Schockaert E.R. 1995. Hard partsin the female system of Syndesmis longicanalis (Platyhelminthes, Rhabdocoela, Umagillidae) are basement membrane derivates // Invertebrate Biology. V. 114. № 4. P. 279−284.
  237. S., Guttowa A., Michajlow W. 1964. Investigation on therespiratory metabolism of eggs and coracidia of Diphyllobothrium latum1.) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Bulletin de l’Academie Polonaise des Sciences. V. 12. P. 29−34.
  238. A. 1973. Differentiation of the tegument and associatedstructures in Diphyllobothrium dendriticum Nitzsch (1824) (Cestoda, Pseudophyllidea) // Int. J. for Parasitol. V. 3. P. 321−327.
  239. V. 1988. Planarian regeneration: an overview of some cellularmechanisms // Zoological Science. V. 5. № 6. P. 1153−1163.
  240. V., Nigro M. 1984. Ultrastructural study of oogenesis in
  241. Monocellis lineate (Turbellaria, Proseriata) // Int. J. Invert. Reprod. Dev. V. 7. P. 105−118.
  242. R., Ladurner P., Nimeth K., Rieger R. 2001. Number anddistribution of S-phase and mitotic cells in Convolutriloba longijissura (Platyhelminthes: Acoela) // Cell Tissue Res. V. 304. P. 401-^08.
  243. Gustafsson M.K.S. 1973. The histology of the neck region of plerocercoids ol
  244. Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea) // Acta Zool. Fennica. № 138. P. 1−16.
  245. Gustafsson M.K.S. 1976 a. Basic cell types in Echinococcus granulosus //
  246. Acta Zool. Fennica. № 46. P. 1−15.
  247. Gustafsson M.K.S. 1976 b. Observations on the histogenesis of nervous tissue in
  248. Diphyllobothrium dendriticum Nitzsch, 1824 (Cestoda, Pseudophyllidea) // Z. Parasitenkd. Bd. 50. S. 313−321.
  249. Gustafsson M.K.S. 1976 c. Studies on cytodifferentiation in the neck region of
  250. Diphyllobothrium dendriticum Nitzsch, 1824 (Cestoda, Pseudophyllidea) // Z. Parasitenkd. Bd. 50. S. 323−329.
  251. Gustafsson M.K.S. 1990. The cells of a cestode — Diphyllobothriumdendriticum as a model in cell biology // The early brain. Acta Acad. Aboen. В. V. 50. № 7. P. 13−44.
  252. D.W. 1976. Diclidophora merlangi. Sloughing and renewal ofhematin cells // Exp. Parasitol. V. 40. P. 41−47.
  253. Halton D.W., Gustafsson M.K.S. 1996. Functional morphology of theplatyhelminth nervous system // Parasitology. V. 113 P. 47−72.
  254. D.W., Maule A.G., Johnston C.F., Fairweather I. 1987. Occurrence of 5-hydroxytryptamine (serotonin) in the nervous system of a monogenean, Diclidophora merlangi И Parasitol. Res. V. 74. P. 151−154.
  255. D.W., Mitchell J.S. 1984. Cotylurus erraticus: Section autoradiography of thymidine incorporation during growth and development in vitro II Parasitol. Res. V. 70. № 4. P. 512−524.
  256. G.H., Olafsen J.A. 1999. Bacterial interactions in early life stages ofmarine cold water fish // Microbial Ecol. V. 38. № 1. P. 1−26.
  257. V., Ehlers U. 2000. The embryonic development of therhabdocoel flatworm Mesostoma lingua (Abildgaard, 1789) // Dev. Genes Evol. V. 210. № 8−9. P. 39915.
  258. V., Jones M., 2003. The embryonic development of thebodywall and nervous system of the cestode flatworm Hymenolepis diminuta II Cell Tissue Res. V. 311. P. 427−435.
  259. Hay E.D., Coward S.J. 1975. Fine structure studies on the planarian,
  260. Dugesia. I. Nature of the «neoblast» and other cell types in Noninjured warms // J. Ultrastruct. Res. V. 50. № 1. P. 1−21.
  261. E. 1980. Ultrastructural study of the tetrathyridium of Mesocestoidescorti Hoeppli, 1925: tegument and parenchyma // Z. Parasitenkd. Bd. 61. S. 135−159.
  262. J.M., Oaks J.A. 1987. Mechanical integration of muscle, tegument andsubtegumental tissues by anchoring fibrils and microfibrils in the cestode Hymenolepis diminuta II Tissue and Cell. V. 19. № 6. P. 881−891.
  263. Izvekova G.I., Kuperman B.I., Kuz’mina V.V. 1997. Digestion anddigestive-transport surfaces in cestodes and their fish hosts // Сотр. Biochem. Physiol. V. 118 A. № 4. P. 1165−1171.
  264. M.K. 1988. Formation of the paruterine capsules and embryonicenvelopes in Cylindrotaenia hickmani (Jones, 1985) (Cestoda, Nematotaeniidae) 11 Austral. J. Zool. V. 36. P. 545−563.
  265. M.K. 1989. Ultrastructure of the cirrus pouch of Cylindrotaeniahickmani (Cestoda, Nematotaeniidae) // Int. J. Parasitol. V. 19. № 8. P. 919−930.
  266. M.K. 1998. Structure and diversity of cestode epithelia // Intern. J. for
  267. . V. 28. P. 913−923.
  268. M.K. 2000. Ultrastructure of the scolex, rhyncheal system andbothridial pits of Otobothrium mugilis (Cestoda: Trypanorhyncha) // Folia Parasitologica. V. 47. P. 29−38.
  269. M.K., Beveridge I. 1998. Nybelinia queenslandensis sp. n. (Cestoda:
  270. Trypanorhyncha) parasitic in Carcharhinus melanopterus, from Australia, with observations on the fine structure of the scolex including the rhyncheal system // Folia Parasitologica. V. 45. P. 295−311.
  271. M.K., Beveridge I. 2001 .Echinobothrium chisholmae n. sp. (Cestoda,
  272. Diphyllidea) from the giant shovel-nose ray Rhinobatos typus from Australia, with observations on the ultrastructure of its scolex musculature and peduncular spines // Syst. Parasitol. V. 50. P. 41−52.
  273. M.K., Whittington I.D. 1992. Nuclear bodies in the egg cells of a
  274. Gyrodactylus species (Platyhelminthes, Monogenea) // Parasitology Research. V. 78. P. 534−536.
  275. Younossi-Hartenstein A., Hartenstein V. 2000. The embryonic developmentof the polyclad flatworm Imogine mcgrathi II Dev. Genes Evol. V. 210. № 8−9. P. 383−398.
  276. J.L. 1993. Ultrastructure des monogenes: listes des especes et desorganes etudies //Buul. fr. Peche Piscic. V. 328. P. 156−188.
  277. J.V. 1998. Cell compound of parenchyma and extracellular matrices of Triaenophorus nodulosus (Cestoda) in ontogenesis // Wiadomosci Parazytologiczne PTP 18th Congress Abstracts V. 44. P. 596.
  278. J.V., Davydov V.G. 2000. Some principles of reproductive system differentiation for cestodes // VIII European Multicolloquium of Parasitology. Acta Parasitologica. V. 45. N 3. P. 170.
  279. J.V. 2001. Ultrastructure of the female genital system in
  280. Proteocephalus torulosus and P. exiguus (Cestoda: Proteocephalidea) // Helmithologia. V. 38. № 2. P. 67−74.
  281. J.V. 2004. Fine structure and development of Triaenophorusnodulosus (Cestoda) during metamorphosis: a review // Acta Zoologica. (Stockh). V. 85 № 1. P. 59−68.
  282. J.V., Kuperman B.I., Davydov V.G. 1998. Ultrastructuralinvestigation of the secondary excretory system in different stages of Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea, Triaenophoridae) // Parasitology. V. 116. P. 373−381.
  283. B.I., Davydov V.G. 1981. The fine structure of glands inoncospheres, procercoids and plerocercoids of pseudophyllidea (Cestoidea) // Int. J. Parasitol. V. 12. № 2/3. P. 135−144.
  284. B.I., Davydov V.G. 1982. The fine structure of frontal glands inadult cestodes // Int. J. Parasitol. V. 12. № 4. P. 285−293.
  285. Kuperman B.I., Kuz’mina V.V. 1994. The ultrastructure of the intestinalepithelium in fishes with different types of feeding // Journal of Fish Biology. V. 44. P. 181−193.
  286. P., Rieger R., Baguna J. 2000. Spatial distribution anddifferentiation potential of stem cells in hatchlings and adults in the marine platyhelminth Macrostomum sp.: A Bromodeoxyuridine analysis // Developmental Biology. V. 226. P. 231−241.
  287. Lee A. 1980. Normal flora of animal intestinal surfaces // Adsorption ofmicroorganisms to surfaces. (Eds. G. Bitton, K.C. Marshall). P. 146−171.
  288. Leser R., Pointel J.-G. 1979. Implantation de la flore bactereenne dans letube digestif de la truite arc-en-ciel. Etude au microscope electronique a balayage // Ann. Zool. Ecol. Anim. V. 11. P. 327−335.
  289. P. 1984. Observations on the extracellular spaces and intercellularjunctions in Diphyllobothrium dendriticum И Acta Zoologica (Stockh). V. 65. № 3. P. 153−158.
  290. R.D. 1965. Macromolecular structure of glycogen in somecyclophyllidean and trypanorhynch cestodes. // J. Parasitol. V. 51. № 4. P. 501−515.
  291. R.D. 1966. Fine structure of the medullary parenchymal cells of atrypanorhynch cestode, Lacistorhynchus tenuis (v. Beneden, 1858), with emphasis on specializations for glycogen metabolism. I I J. Parasitol. V. 52. № 3. P. 417−427.
  292. R.D. 1975. Surface ultrastructure and cytochemistry of parasitichelminths // Exp. Parasitol. V. 37. № 2. P. 267−339.
  293. R.D., Byram J. 1967. The ultrastructure of cestode muscle. // J.
  294. . V. 53. № 2. P. 326−344.
  295. R.D., Hildreth M.B. 1983. The fine structure of adult tapewoms //
  296. Biology of the Eucestoda (Eds. Arme C. & Pappas W.P.). / London: Academic. Press. V. 1. P. 177−233.
  297. R.D., Specian R. 1980. The morphology, histology and finestructure of the adult stage of the cyclophyllidean tapeworm Hymenolepis diminuta II Biology of the tapeworm Hymenolepis diminuta. (Ed. Arrai M.P.) / London: Academic Press. P. 157−280.
  298. R.D., Oaks J.A., Mueller J.F. 1974. Brush border development inthe tegument of the tapeworm, Spirometra mansonoides II J. Parasitol. V. 60. № 2. P. 209−226.
  299. J.S. 1984. Cercomer theory: significance of sperm morphology, oncosphere metamorphosis, polarity reversal and the cercomer toevolutionary relationships of Monogenea to Cestoides // Acta Parasitol. Pol. V. 29. F. 1. P. 11−21.
  300. G. 1971. On the procercoid protonephridial systems of the
  301. Diphyllobothrium species (Cestoda, Pseudophyllidea) and Janicki’s cercomer theory // Zoologica Scripta. V. 1. P. 43−56.
  302. Martens Els. E. 1984. Ultrastructure of the spines in the copulatory organ ofthe some Monocelididae (Turbellaria, Proseriata) // Zoomorphology. V. 104. P.261−265.
  303. Martens Els. E. 1986. Comparative ultrastructure of copulatory organshaving a stylet in the Proseriata (Turbellaria) // Hydrobiologia. V. 132. P. 165−173.
  304. Martens Els. E., Schockaert E.R. 1985. Studies on the ultrastructure of thegenital organs in Proseriata (Turbellaria). I. Cirri/era aculeate (Ax) (Coelogynoporidae) // Zoologica Scripta. V. 14. № 2. P. 81−90.
  305. A.G., Halton D.W., Johnston C.F., Fairweather I., Shaw C. 1989 a.1.munocytochemical demonstration of neuropeptides in the fish-gill parasite, Diclidophora merlangi (Monogenoidea) // International J. for Parasitology. V. 19. P. 307−316.
  306. W. 1932. Triaenophorus crassus Forel (T. robustus Olsson) etson diveloppement // Ann. Parasitol. Hum. Сотр. V. 10. N 3. P. 257−270.
  307. Michajlov W. Les stades larvaires de Triaenophorus nodulosus (Pall.) 1. Lecoracidium // Ann. Parasitol. Hum. Сотр. 1933. Vol. 11. P.339−348.
  308. D., Swiderski Z., Eira K., Miquel J. 2005. An ultrastructural studyof embryonic envelope formation in the anoplocephalid cestode Mosgovoyia ctenoides (Railliet, 1890) Beveridge, 1978 // Parasitol. Res. V. 95. P. 243−251.
  309. M., Best J.B. 1974. Electron microscopic studies of planarianregeneration. II. Changes in epidermis during regeneration // J. Exp. Zool. V. 187. P. 345−374.
  310. M., Best J.B., Noel J. 1969. Electron microscopic studies ofplanarian regeneration. I. Fine structure of neoblasts in Dugesia dorotocephala И J. Ultrastruct. Res. V. 27. № 1−2. P. 7−23.
  311. P.M. 1970. Histogenesis of the rostellar hooks of Taenia crassiceps
  312. Zeder, 1800) (Cestoda) // J. Parasitol. V. 56. № 5. P. 947−961.
  313. K., Ladurner P., Gschwentner R., Salvenmoser W., Rieger R. 2002.
  314. Cell renewal and apoptosis in Macrostomum sp. // Cell Biology International. V. 26. № 9. P. 801−815.
  315. P.M. 1968 a. Autoradiographic studies on reproduction in
  316. Philophthalmus megalurus (Cort, 1914) (Trematoda) // J. Parasitol. V. 54. № l.P. 43−48.
  317. P.M. 1968 b. Uptake and incorporation of glucose, tyrosine, leucine, and thymidine by adult Philophthalmus megalurus (Cort, 1914) (Trematoda), as determined by autoradiopraphy // J. Parasitol. V. 54. № 2. P. 295−304.
  318. R.E. 1961. The mature oncosphere of Hymenolepis diminuta II J.
  319. . V. 47. P. 197−207.
  320. R.E. 1962. Continuity of morphology from oncosphere to earlycycticercoid in the development of Hymenolepis diminuta (Cestoda, Cyclophyllidea) // Exp. Parasitol. V. 12. P. 1−6.
  321. R.E. 1968 a. Characteristics for two classes of embryonic cells inoncospheres of Hymenolepis diminuta stained for cytoplasmic substances // Trans. Amer. Microsc. Soc. V. 87. P. 82−97.
  322. R.E. 1968 b. The basic cellular pattern for undifferentiatedoncospheres of Hymenolepis diminuta И Trans. Amer. Microsc. Soc. V. 87. № 4. P. 448−463.
  323. R.E. 1971. Criteria for anterior polarity and symmetry in tapewormhexacanth embryos // Proceedings of the Helminthological Society of Washington. V. 23. P. 120−124.
  324. M.G. 1993. Apoptosis- Flow Cytometric Studies // European
  325. Microscopy and Analysis. P. 27−29.
  326. I. 1990. Stem cells in microturbellarians. An autoradiographic andimmunocytochemical study//Protoplasma. V. 158. P. 109−120.
  327. I., Reuter M. 1983. Asexual reproduction in Microstomum lineare
  328. Turbellaria). I. An autoradiographic and ultrastructural study // International Journal of Invertebrate Reproduction. V. 6. P. 197−206.
  329. P.W. 1988. The relative roles of the intestines and external surfacesin the nutrition of monogeneans, digeneans and nematodes // Parasitology. V. 96. S. 105−121.
  330. K.J. 1972. Studies on regeneration blastemas of the planarian
  331. Dugesia tigrina with special reference to differentiation of muscle-connective tissue filament system // Wilhelm Roux Arch. Entw Mech. Org. V. 169. № 2. P. 134−169.
  332. K.J. 1983. Fine structural observations on the turbellarians
  333. Stenostomum sp. and Microstomum lineare with special reference to the extracellular matrix and connective tissue systems // Acta Zool. (Stockh.). V. 64. № 4. P. 177−190.
  334. K.J. 1991. Invited review: Structure and composition of basementmembranes and other basal matrix systems in selected invertebrates // Acta Zool. (Stockh.). V. 72. № 4. P. 181−201.
  335. K.J., Pedersen L.R. 1988. Fine structural observations on theextracellular matrix (ECM) of Xenoturbella bocki Werstblad, 1949 // Acta Zool. (Stockh.). V. 67. P. 103−113.
  336. D.B. 1970. Electron microscope and histochemical studies on theeggs of Hymenolepis diminuta II J. Parasitol. Vol.56, № 1. P. 84−97.
  337. R., Gschwentner R., Schurmann W., Rieger R.M., Ladurner P. 2004.
  338. The significance of stem cells in free-living flatworms: one common source for all cells in the adult // Journal of Applied Biomedicine. V. 2. P. 21−35.
  339. L.G., Izvekova G.I. 2005. Detection of bacteria associated withthe tegument of caryophyllidean cestodes // Helmithologia. V. 42. № 1. P. 9−14.
  340. I.M. 2006. An ultrastructural study of alimentary tractdevelopment in the cercariae of Diplostomum pseudospathaceum (Digenea: Diplostomidae) // Parasitology Research. V. 99. N. 4. P. 362 367.
  341. L.B., Davydov V.G. 1988. Studies of localization of Amphilinafoliacea in definitive hosts // Helminthologia. V. 25. P. 129−138.
  342. C.S. 1997. Stem cells. Academic Press. London.
  343. M. 1922. Recherches sur le parenchyme des Plathelminthes // Arch.
  344. Morph. Gen. Exp. V. 5. P. 1−174.
  345. Presas A.M.F., Robert L., Jimenes J.A., Willms K. 2005. Apoptosis patternsin experimental Taenia solium and Taenia crassiceps strobilae from golden hamsters // Parasitology Research. V. 96. № 1. P. 1−5.
  346. F.G. 1988. The muscle, nervous and excretory system of theplerocercoid of Callitetrarhynchus gracilis (Rud., 1819) (Pintner, 1931) (Cestoda: Trypanorhyncha) from Bermuda fishes // Parasitology. V. 96. № 2. P. 337−351.
  347. M. 1970. Characterization of cell types in the parenchyma of
  348. Schistosoma mansoni // Parasitology. V. 60. № 2. P. 273−279.
  349. М., Colucci A.V. 1968. Localization of glycogen in the cestode,
  350. Hymenolepis diminuta II J. of Cell. Biol. V. 39. № 3. P. 754−763.
  351. K.S., Arme C. 1982. The microarchitecture of the structured bodiesin the tegument of Caryophyllaeus laticeps (Caryophyllidea: Cestoda) // J. Parasitol. V. 68. № 3. P. 42532.
  352. K.S., Arme C. 1984. Maturation of the scolex syncytium in themetacestod of Hymenolepis diminuta, with special reference to microtrix formation // J. Parasitol. V. 88. № 2. P. 341−349.
  353. R.M. 1981. Morphology of the Turbellaria at the ultrastructural level
  354. . V. 84. P. 213−229.
  355. Rieger R.M., Tyler S., Smith J.P.S., Rieger G.E. 1991. Platyhelminthes:
  356. Turbellaria // Microscopic anatomy of invertebrates / Platyhelminthes and Nemertinea (Ed. Harrison F.W.) V. 3. Wiley-Liss Inc. New-York. P. 7140.
  357. Rieger R.M., Legniti A., Ladurner P., Reiter D., Asch E., Salvenmoser W.,
  358. W., Peter R. 1999. Ultrastructure of neoblasts in microturbellaria: significance for understanding stem cells in free-living Platyhelminthes // Invertebr. Reprod. Dev. V. 35. P. 127−140.
  359. E., Olsen R.E., Mayhew T.M., Myklebust R. 2003. Electronmicroscopy of the intestinal microflora of fish // Aquaculture. V. 227. P. 39515.
  360. K., Garlick P.R. 1985 a. Two ciliate sense in the larva of
  361. Austramphilina elongata Johnston, 1931 (Amphilinidea) // Zoomorphology. V. 105. P. 30−33.
  362. K., Garlick P.R. 1985 b. Subsurface sense receptors in the larva of
  363. Austramphilina elongata Johnston, 1931 (Amphilinidea) // Zoomorphology. V. 105. P. 34−38.
  364. K., Garlick P.R. 1985 c. Ultrastructure of the Posterior sense receptorof larval Austramphilina elongata (Amphilinidea) // International J. for Parasitology. V. 15. N4. P. 39902.
  365. К., Watson N. 1987. Ultrastructure of the protonephridial system oflarvae Austramphilina elongata (Platyhelminthes, Amphilinidea) // J. Submicrosc. Cytol. V. 19. № 1. P. 113−118.
  366. K., Watson N. 1988. Development of the protonephridia of
  367. Austramphilina elongata (Plathelminthes, Amphilinidea) // Parasitol. Res. V. 74. P. 255−261.
  368. K. 1966. Embryogenesis in cestodes // Adv. Parasitol. V. 20.1. P. 759−767.
  369. K. 1967. Embryogenesis in Hymenolepis diminuta. II Glycogendistribution in the embryos. // Exp. Parasitol. V. 20. P. 98−105.
  370. K. 1972. Ultrastructure of embryonic envelopes and theirdifferentiation in Hymenolepis diminuta II J. Parasitol. V. 58. № 5. P. 849 863.
  371. K. 1973. Ultrastructure of embryonic syncitial epithelium in acestode Hymenolepis diminuta II Parasitology. V. 66. № 1. P. 9−18.
  372. E., Baguna J. 1984. Regeneration and pattern formation in planarians. I. the pattern of mitosis in anterior and posterior regeneration in Dugesia (G) tigrina, and a new proposal for blastema formation // J. Embryol. Exp. Morphol. V. 83. P. 63−80.
  373. W., Betz S., Peter R. 1998. Separation and subtyping ofplanarian neoblasts by density gradient centrifiigation and staining // Hydrobiologia. V. 383. P. 117−124.
  374. J.M. 1993. Apoptosis: suicide, execution or murder? // Trends incell biology. V.3.P. 141−144.
  375. N., Umesono Y., Orii H., Sakurai Т., Watanabe K., Agata K. 1999.
  376. Expression of vasa (vas)-related genes in germline cells and totipotent somatic stem cells of vasa planarians // Del. Biol. V. 206. P. 73−87.
  377. J. 1973. Functional morphology of cestode larvae // Adv. Parasitol. V.11. P. 395−480.
  378. V.R. 1970. Observations on the epidermis of the miracidium andon the formation of the tegument of the sporocyst of Fasciola hepatica II Parasitology. № 61. P. 177−190.
  379. H.M. 1962. The organization, ontogeny, and orientation of thecestode // Quarterly Review of Biology. V. 37. P. 23−34.
  380. T. 1972. The development of organ systems in cestodes. A studyof histology of Hymenolepis diminuta (Rudolphi, 1819) (Hymenolepididae) h Acta Parasitol. Polonica. V. 20. № 37. P. 449−462.
  381. T. 1974. The development of organ systems in cestodes. II
  382. Histogenesis of the reproductive system in Hymenolepis diminuta (Rudolphi, 1819) (Hymenolepididae) // Acta Parasitol. Polonica. V. 22. № 16. P. 179−190.
  383. T. 1980 a. The development of organ systems in cestodes. IV
  384. Histology of Dioecocestus aspera (Mehlis, 1831) (Dioecocestidae) and the histogenesis of its reproductive system // Acta Parasitol. Polonica. V. 27. № 51. P. 443−450.
  385. T. 1980 b. The development of organ systems in cestodes. Ill
  386. Histology of Diploposthe laevis (Bloch, 1782) and D. bifaria (Siebold in Creplin, 1846) (Hymenolepididae) and histogenesis of their reproductive system // Acta Parasitol. Polonica. V. 26. № 16. P. 143−152.
  387. Z. 1972. La structure fine de l’oncosphere du cestode
  388. Catenotaeniapusilla//La Cellule. V. 69. P. 207−237.
  389. Z. 1973. Electron microscopy and histochemistry of oncospheralhook formation by the cestode Catenotaenia pusilla II Intern. J. Parasitol. V. 3. P. 27−33.
  390. Z. 1976. Oncospheral hook morphogenesis in the Davaineidcestode Inermicapsifer madagascariensis (Davaine, 1870) Baer, 1956 // Intern. J. Parasitol. V. 6. P. 495−504.
  391. Z. 1983. Echinococcus granulosus: hook-muscle systems andcellular organization of infective oncospheres // Int. J. Parasitol. V. 13. № 3. P. 289−299.
  392. Z. 1986. Ultrastructure of the parenchymatic capsules of thecestode Inermicapsifer madagascariensis IIZ. Electron. Microsc. V. 35. № 4. P.3331−3332.
  393. Z. 1994. Homology and analogy in egg envelopes surroundingmiracidia of Schistosoma mansoni and coracidia of Bothriocephalus clavibothrium II Acta Paracitologica. V. 39. № 3. P. 123−130.
  394. Z., Mackiewicz J. S. 2004. Ultrastructural studies on the cellularorganization of the coracidium of the cestode Bothriocephalus clavibothrium Ariola, 1899 (Pseudophyllidea, Bothriocephallidea) // Acta Parasitologica. V. 49. № 2. P. 116−139.
  395. Z., Mokhtar F. 1974. The fine structure of the coracidia of
  396. Bothriocephalus clavibothrium Ariola, 1899 (Cestoda, Pseudophyllidea) // Proceedings 3-rd International Congress of Parasitology. Vol. 3. P. 412 413.
  397. Swiderski Z., Ndiaye P.I., Miguel J., Tkach V., Marchand В., Chomicz L.,
  398. Swiderski Z., Ndiaye P.I., Miguel J., Tkach V., Marchand В., Chomicz L.,
  399. Swiderski Z., Salamatin R.V., Grytner-Ziecina В., Kornyushin V.V., Conn
  400. D.B. 2004. Electron microscope study on oncospheral envelopemorphogenesis in the dilepidid cestode, Dilepis undula (Schrank, 1788) // Acta Parasitologica. V. 49. № 4. P. 300−308.
  401. Z., Tkach V. 1997. Ultrastructural studies on the cellularorganization of the oncospheres of nematotaeniid cestode, Nematotaenia dispar (Goeze, 1782) // Acta Parasitologica. V. 42. P. 46−54.
  402. Z., Tkach V. 1997 b. Ultrastructure of oncospheral hookformation in the Nematotaeniid cestode, Nematotaenia dispar (Goeze, 1782) // Intern. J. for Parasitol. V. 27. № 3. P. 299−304.
  403. Z., Tkach V. 1999. Electron microscopical studies on the cellularorganization of the oncospheres of the hymenolepidid cestode, Staphylocystoides stefanskii (Zainowski, 1954) // Acta Parasitologica. V. 44. P. 31−38.
  404. Z., Tkach V.V., Salamatin R.V. 2000. Oncospheral hookmorphogenesis in the cestode Dilepis undula (Schrank, 1788) (Cyclophyllidea, Dilepididae) // Acta Parasitologica. V. 45. № 4. P. 322 331.
  405. Z., Tkach V., Vaucher C. 2000 a. Fine structure of the infectiveeggs of the dilepidid cestode Hepatocestus hepaticus (Baer, 1932), a parasite of shrews // Acta Parasitologica. V. 45. № 2. P. 71−82.
  406. Swiderski Z., Xylander W.E.R. 2000. Vitellocytes and vitellogenesis incestodes in relation to embryonic development, egg production and life cycle // Int. J. for Parasitol. V. 30. P. 805−817.
  407. G.W. 1999. Analysis of the intestinal microflora: a renaissance //
  408. Antonie van Leeuwenhoek. V. 76. P. 265−278.
  409. E.W., Thomas J.N. 1968. Membrane (contact) digestion in the threespecies of tapeworm Hymenolepis diminuta, H. microstoma and Moniezia expansa//Parasitology. V. 58. P. 535−546.
  410. Theise N.D., Barde S., Saxena R., Henegariu O., Sell S., Crawford J.M.,
  411. D.S. 2000. Derivation of hepatocytes from the bone marrow cells in mice after radiation-induced myeloablation // Hepatology. V. 31. P. 235−240.
  412. L.T. 1984. Parasitic Platyhelminths // Biol. Integument, Berlin.1. P. 131−191.
  413. L.T., Read C.P. 1970. Cell relationships Hymenolepis diminuta
  414. . V. 60. № 2. P. 181−184.
  415. V.V., Swiderski Z. 1997. Late stages of egg maturation in the cestode
  416. Pseudhymenolepis redonica Joyeux et Baer, 1935 (Cyclophyllidea, Hymenolepididae), a parasite of shrews // Acta Parasitologica. V. 42. № 2. P. 97−108.
  417. V.V., Swiderski Z. 1998. Differentiation and ultrastructure of theoncospheral envelopes in the hymenolepidid cestode Staphylocystoides stefanskii (Zarnovski, 1954) // Acta Parasitologica. V. 43. N 4. P. 222−231.
  418. J.E. 1983. Metacestodes: Morphology and Development // Biologyof Eucestoda. (Ed. Arme C.) / Acad. Press. London. V. 1. P. 139−176.
  419. M. 1967. The post-embryonic developmental stages of cestodes //
  420. Advances in Parasitology. V. 5. P. 247−297.
  421. H. 1930. Studien zur Entwicklung von Diphyllobothrium. II. Teil:
  422. Die Entwicklung des Procercoids von Diphyllobothrium latum II Ztschr. Parasitenk. Bd. 2. N 5. S. 629−644.
  423. Ward S.M., McKerr G., Allen J.M. 1986. Structure and ultrastructure ofmuscle system within Grillotia erinaceus metacestodes (Cestoda: Trypanorhyncha) // Parasitology. V. 93. P. 587−597.
  424. R.A., Mizukawa К. 1985. Serotonin-like immunoreactivity in thecestode Hymenolepis diminuta II J. Сотр. Neuroi. V. 234. № 4. P. 431 440.
  425. I.L. 2000. Stem cells: units of development, units of regeneration, and units in evolution // Cell. V. 100. P. 157−168.
  426. Wikgren B-J.P. 1964. Studies on the mitotic activity in plerocercoids of
  427. Diphyllobothrium latum L. (Cestoda) // Comment. Biol. Soc. Scient. Fennica. V. 27. № 2. P. 1−33.
  428. Wikgren B-J.P. 1966. The effect of temperature on the cell division cycle indiphyllobothrid plerocercoids // Acta Zool. Polonica. V. 114. P. 27.
  429. M. 1986. Diphyllobothrium dendriticum. The nervous system ofearly larval stages of the cestode Diphyllobothrium dentriticum // Acta Zool. V. 67. № 3. P. 155−163.
  430. Wikgren B-J., Gustafsson M. 1967. Duration of the cell of germinative cellsin plerocercoids of Diphyllobothrium dendriticum // Z. Parasitenkd. V. 29. P. 275−281.
  431. Wikgren B-J., Gustafsson M. 1971. Cell proliferation and histogenesis indiphyllobothrid tapeworms (Cestoda) // Acta Acad. Aboensis. V. 31. № 2. P. 1−9.
  432. Wikgren B-J., Gustafsson M.K.S., Knuts I.M. 1971. Primary anlageformation in diphyllobothrid tapeworms // Z. Parasitenkd. V. 36. P. 131 139.
  433. Wikgren B.-J.P., Knuts G.M. 1970. Growth of subtegumental tissue incestodes by cell migration // Acta Acad. Aboen. В 30. № 16. P. 1−6.
  434. L. 1930. Das genus Archigetes R. Leuck. Eine studie zur
  435. Anatomic, Histogenese, Systematik und Biologie // Mem. Acad. Polon. S. B. V. 2. P. 1−160.
  436. A. 1998. Chromatin: structure and function. Academic Press. San1. Diego.
  437. Xylander W.E.R. 1987. Ultrastructure of the lycophora larva of Gyrocotyleurna (Cestoda, Gyrocotylidea) I. Epidermis, neodermis anlage and body musculature //Zoomorphol. V. 106. P. 352−360.
  438. Xylander W.E.R. 1987 a. Ultrastructure of the lycophora larva of Gyrocotyleurna (Cestoda, Gyrocotylidea) III. The protonephridial system // Zoomorphol. Vol. 107. P. 88−95.
  439. Xylander W.E.R. 1987 b. The protonephridial system in Cestoda: evolutionary changes and their possible functional significance // Verhandlungen der Deutschen Zoologischen Gesellschaft 1987, Bielefeld. V. 80. P.257−258.
  440. Xylander W.E.R. 1987 c. Ultrastructure of the lycophora larva of Gyrocotyleurna (Cestoda, Gyrocotylidea). II. Receptors and nervous system // Zool. Anz. V. 219. № 3−4. P. 239−255.
  441. Xylander W.E.R. 1992. Investigations on the protonephridial system ofpostlarval Gyrocotyle urna and Amphilina foliacea (Cestoda) // Intern. J. for Parasitol. V. 22. P. 287−300.
  442. Xylander W.E.R. 1996. Neodermata // Spezielle Zoologie. (Hrsg.Westheide
  443. W., R.M. Rieger). Teil 1: Einzeller und Wirbellose / Stuttgart, New York.: Gustav Fischer Verlag. S. 230−258.
Заполнить форму текущей работой

Сдать сессию!