Молекулярно-генетическая характеристика индивидуального района интеркалярного гетерохроматина 75C1-2 политенных хромосом дрозофилы

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Содержание

Список основных используемых сокращений

1. Особенности организации и функционирования генома в районах интеркалярного и прицентромерного гетерохроматина (обзор литературы).

1.1. Введение.

1.2. Молекулярная организация молчащих районов.

1.2.1. Нуклеосомная организация и модификации гистонов в молчащих районах хромосом.

1.2.2. Белковые комплексы, обеспечивающие структуру молчащих районов.

1.2.2.1. Белки группы Ро1усошЬ.

1.2.2.2. Не1егосЬгошайп Рго1еш1 (НР1).

1.2.2.3. РНК-интерференция как механизм регуляции активности генов.

1.2.2.4. Метилирование цитозина.

1.2.2.5. Другие системы образования репрессированной структуры хроматина

1.3. Характеристики молчащих районов хроматина.

1.3.1. Плотная упаковка хроматина.

1.3.2. Поздняя репликация.

1.3.2.1. Педорепликация ГХ в политенных хромосомах.

1.3.2.2. Двуцепочечные разрывы ДНК.

1.3.2.3. Эктопические контакты в политенных хромосомах.

1.3.3. Генетическое содержание и транскрипционная активность районов ГХ.

1.3.4. Распространение репрессированного состояния хроматина вдоль по хромосомам.

1.3.4.1. Ограничения для распространения репрессированного состояния хроматина.

1.3.4.2. Эффект положения.

1.3.5 Наследование статуса хроматина в ряду клеточных поколений.

1.3.5.1. Появление молчащих районов в эмбриогенезе.

1.3.5.2. Наследование статуса хроматина в процессе репликации ДНК.

1.3.5.3. Обратимость сайленсинга.

1.4. Доменная организация хроматина.

1.4.1. Кластеризация генов.

1.4.2. Транскрипционная активность и время репликации.

1.4.3. Расположение хроматина в ядре.

1.4.4. Другие механизмы образования доменов.

1.4.5. Различия доменной организации в разных тканях организма.

1.4.6. Самоорганизация ядерного пространства в эволюции.

1.5. Влияние белка SUUR на проявление свойств гетерохроматина.

1.5.1. Белок Suppressor of- Underreplication.

1.5.2. Локализация SUUR на хромосомах.

1.5.3. Эктопическая экспрессия SUUR.

1.5.4. Взаимодействия, SUUR с белками ГХ.

1.5.5. Возможные механизмы действия белка SUUR.

1.6. Разнообразие ГХ.

Молекулярно-генетическая характеристика индивидуального района интеркалярного гетерохроматина 75C1-2 политенных хромосом дрозофилы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

Одним из важнейших направлений современной клеточной биологии является изучение регуляции активности генов в контексте структуры хроматина. К этому направлению относится исследование молчащих хромосомных доменов. Кроме прицентромерных районов хромосом, которые состоят, в основном, из повторенной ДНК и почти не содержат генов (прицентромерный гетерохроматин, ПГХ), к молчащим районам относят также интеркалярный гетерохроматин (ИГХ). В политенных хромосомах слюнных желез D. melanogaster эти сравнительно небольшие районы разбросаны по плечам хромосом (обзор: Zhimulev I.F. et aL, 2003а)-и часто содержат кластеры уникальных тканеспецифичпых генов со сходными профилями транскрипции-(Belyakin S.N. et al., 2005; 2009).

Общими свойствами молчащих районов являются репрессия транскрипции, плотная упаковка хроматина и поздняя репликация ДНК в S-фазе клеточного цикла. В политенных хромосомах эти районы также демонстрируют недорепликацию ДНК, которая приводит к разломам и эктопическим контактам между разными районами гетерохроматина (Zhimulev I.F. et al., 2003a). Маркером районов прицентромерного и интеркалярного гетерохроматина в политенных хромосомах слюнных желез дрозофилы является белок SUUR, продукт гена SnUR (Suppressor of Unclerreplicatiori). Фенотип мутации SnUR — подавление недорепликации в гетерохроматиновых районах политенных хромосом — обусловлен тем, что все районы интеркалярного гетерохроматина и некоторые прицентромерные районы заканчивают репликацию существенно раньше, чем в норме. Механизмы влияния гена SnUR на репликацию ДНК пока неизвестны (Belyaeva E.S. et al., 1998; обзоры: Zhimulev I.F. et al., 2003aКолесникова Т.Д. и др., 2006).

Несмотря на интенсивное изучение белкового состава и механизмов репликации районов интеркалярного гетерохроматина дрозофилы, в настоящее время организация этих районов и даже их функции остаются в большинстве случаев неизвестными. Одна из проблем, стоящих перед исследователями, это отсутствие данных о локализации цитологически определяемых районов интеркалярного гетерохроматина на физической карте генома дрозофилы. В результате до сих пор можно говорить лишь об очень приблизительном соответствии плотных дисков политенных хромосом, которые демонстрируют разломы, и' районов поздней репликации и недорепликации, обнаруженных молекулярными методами в различных геномных исследованиях. Изучение дисков политенных хромосом методами молекулярной биологии во многих случаях сильно затруднено. К тому же невозможно точно определить, какие гены находятся в дисках интеркалярного гетерохроматина политенных хромосом. Сравнение свойств этих районов в диплоидных тканях и в тканях с политенными хромосомами также оказывается' невозможным.

Сейчас очень быстро развивается техника исследования распределения белков, времени репликации и профилей экспрессии генов на уровне целых геномов. Однако из-за неудобства работы с ДНК неделящихся полиплоидных клеток, внутренняя организация районов интеркалярного гетерохроматина в политенных хромосомах остается почти неизученной. Непонятно, являются ли эти районы цельными1 структурами или состоят из отдельных частей, независимо демонстрирующих свойства интеркалярного гетерохроматина. Из этих положений вытекают цели настоящей работы.

Цель и задачи исследования

Цель работы — провести детальный цитогенетический анализ индивидуального района интеркалярного гетерохроматина политенных хромосом слюнных желез дрозофилы. В данной работе был исследован район 75С1−2. Для достижения цели нами были поставлены следующие задачи:

1. Получить ряд хромосомных перестроек, затрагивающих район 75С1−2.

2. Получить систему зондов для молекулярно-биологических работ с разными участками района 75С1−2.

3. Определить с максимальной точностью расположение дисков района 75С1−2 на физической карте генома дрозофилы.

4. Изучить локализацию белка ЗЩЖ и его влияние в разных частях района 75С1−2.

5. Получить профиль политенизации района 75С1−2 методом Саузерн-блот гибридизации.

6. Изучить влияние хромосомных перестроек на степень политенизации отдельных частей района 75С1−2.

Научная новизна.

Впервые с высокой точностью определены границы дисков и исследовано распределение различных характеристик хроматина по длине индивидуального района интеркалярного гетерохроматина политенных хромосом дрозофилы.

Впервые показана независимость связывания белка 81ЛШ с разными фрагментами района интеркалярного гетерохроматина.

Впервые показано влияние на степень политенизации района интеркалярного гетерохроматина окружающих последовательностей и отдельных фрагментов самого района.

Практическая ценность.

Точное картирование и подробная характеристика внутренней структуры района 75С1−2 позволяет планировать и проводить исследования тонких процессов, связанных с интеркалярным гетерохроматином. Кроме того, полученные в данной работе линии дрозофилы с перестройками в районе 75С1−2, а также клонированные зонды из этого района могут быть использованы в работе по цитогенетике дрозофилы.

Апробация работы.

Результаты работы представлены на международных конференциях в докладах и стендовых сообщениях: на 7-ой, 8-ой и 9-ой международных конференциях по гетерохроматину дрозофилы (Губбио, Италия, 2005, 2007, 2009) — на международной конференции «Генетика в России и мире» (Москва, 2006) — на международной конференции, посвященной 90-летию академика Д. К. Беляева (Новосибирск, 2007) — на международной молодежной научно-методической конференции «Проблемы молекулярной и клеточной биологии» (Томск, 2007) — на юбилейной конференции, посвященной 50-летию Института цитологии РАН (Санкг-Петербург, 2007) — на международной конференции «Хромосома 2009» (Новосибирск, 2009).

Объем работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов, обсуждения, а также выводов и списка цитируемой литературы (290 ссылок). Работа изложена на 147 страницах машинописного текста, содержит 3 таблицы и 22 рисунка. Нумерация рисунков и таблиц производится отдельно для каждой главы.

Выводы.

В данной работе на примере района 75С1−2 политенных хромосом D. melanogaster впервые с высокой точностью были определены границы индивидуального района ИГХ и проведен детальный анализ его внутренней организации. Обобщая полученные результаты, можно сделать следующие выводы:

1. Район интеркалярного гетерохроматина 75С1−2 политенных хромосом D. melanogaster с точностью до 10 т. п. о. соответствует участку физической карты хромосомного плеча 3L с координатами 18 173 300−18 618 800 (release 5.22). Район занимает примерно 445 т. п. о. и содержит около 25 генов.

2. Белок SUUR независимо связывается с дистальной и проксимальной половинами района 75С1−2 и при избыточной экспрессии независимо образует из них «пузыри».

3. Район интеркалярного гетерохроматина 75С1−2, обладает асимметричным профилем политенизации, причем максимум недорепликации находится на дистальном краю района.

4. Зона недорепликации в районе 75С1−2 расширяется при введении в геном двух дополнительных копий гена SuUR. Проксимальная граница зоны становится при этом более пологой.

5. Выявлена сложная зависимость степени политенизации отдельных частей района 75С1−2 от окружающих последовательностей, что позволяет предполагать существование локальных барьеров, препятствующих прохождению вилки репликации. Согласно этой гипотезе самые «сильные» барьеры должны располагаться в дистальной части района.

Показать весь текст

Список литературы

Васильева JI.A. Статистические методы в биологии. Новосибирск: Институт цитологии и генетики СО РАН, 2004. 128 с.
Волкова Е.И., Белякин С. Н., Беляева Е. С., Жимулев И. Ф. Распределение разрывов индуцированных хромосомных перестроек по длине хромосом и проблема интеркалярного гетерохроматина Drosophila melanogaster // Генетика. 2008. Т. 44. № 6. С. 746−751.
Жимулев И.Ф., Макунин И. В., Волкова Е. И. Пирротта В., Беляева Е. С. Эффект четырех доз гена Su(UR)ES на интеркалярный гетерохроматин у Drosophila melanogaster II Генетика. 2000. Т. 36. № 8. С. 1−9.
Жимулев И.Ф. Гетерохроматин и эффект положения гена. Новосибирск: Наука, 1993.491 с.
Кокоза Е.Б., Колесникова Т. Д., Зыков И. А., Беляева Е. С., Жимулев И. Ф. Обратимая деконденсация гетерохроматиновых районов политенных хромосом D. melanogaster при эктопической экспрессии гена SnUR И Доклады Академии наук. 2009. Т. 426. № 3. С. 421−423.
Коряков Д.Е. Модификации гистонов и регуляция работы хроматина // Генетика. 2006. Т. 42. № 9. С. 1170−1185.
Куличков В.А., Жимулев И. Ф. Анализ пространственной организации генома Drosophila melanogaster на основе данных по эктопической конъюгации политенньтх хромосом // Генетика. 1976. Т. 12. № 5. С. 81−89.
Маниатис Т, Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва: Мир, 1984. 479 с.
Прокофьева-Бельговская А.А., Хвостова В. В. Распределение разрывов в X-хромосоме Drosophila melanogaster II Докл. Акад. наук СССР. 1939. Т. 23'. С. 269−271.
Шевченко А.И., Павлова С. В., Дементьева Е. В., Голубева Д. В., Закиян С. М. Модификации хроматина в процессе инактивации Х-хромосомы у самок млекопитающих // Генетика. 2006. Т. 42. № 9: С. 1225−1234.
Aggarwal B.D., Calvi B.R. Chromatin regulates origin activity in Drosophila follicle cells //Nature. 2004. V. 430. № 6997. P. 372−376.
Ahmad K., Henikoff S. Histone H3 variants specify modes of chromatin assembly // Proc Natl Acad Sci USA. 2002. V. 99. № 4. P: 16 477−16 484.
Akhtar A., Gasser S. Mi The nuclear envelope and transcriptional control // Nat Rev Genet. 2007. V. 8. №, 7. P. 507−517.
Alekseyenko A.A., Demakova O.V., Belyaeva E.S., Makarevich G.F., Kotlikova I.V., Nothiger R., Zhimulev I.F. Dosage compensation and intercalary heterochromatin in X chromosomes of Drosophila melanogaster II Chromosoma. 2002. V. 111. № 2. P. 106−113.
Allshire R., Bickmore W. Pausing for thought on the boundaries of imprinting // Cell. 2000. V. 102. № 6. P. 705−708.
Andrews J., Bouffard G.G., Cheadle C., Lu J., Becker K.G., Oliver B. Gene discovery using computational and microarray analysis of transcription in the Drosophila melanogaster testis // Genome Res. 2000. V. 10. № 12. P. 2030−2043.
Andreyeva E.N., Belyaeva E.S., Semeshin V.F., Pokholkova G.V., Zhimulev I.F. Three distinct chromatin domains in telomere ends of polytene chromosomes in Drosophila melanogaster Tel mutants //J Cell Sci. 2005. V. 118. P. 5465−5477.
Andreyeva E.N., Kolesnikova T.D., Belyaeva E.S., Glaser R.L., Zhimulev I.F. Local DNA underreplication correlates with accumulation of phosphorylated H2Av in the
Drosophila melanogaster polytene chromosomes // Chromosome Res. 2008. V. 16. № 6. P. 851−862.
Ashburner M- Golic K.G., Hawley R.S. Drosophila. A laboratory handbook. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2005. 1409 p.
Avner P., Heard E. X-chromosome inactivation: counting, choice and initiation // Nat Rev Genet. 2001. V. 2. № 1. P. 59−67.
Azzalin C.M., Lingner J. Telomeres: the silence is broken // Cell Cycle. 2008. V. 7. № 9. P. 1161−1165.
Badugu R., Yoo Y., Singh P.B., Kellum R. Mutations in the heterochromatin protein'1 (HP1) hinge domain- affect HP1 protein interactions and chromosomal distribution // Chromosoma. 2005. V. 113. № 7. P. 370−384.
Bannister A.J., Zegerman P., Partridge J.F., Miska E.A., Thomas J.O., Allshire R.C., Kouzarides T. Selective recognition of methylated lysine 9 on histone H3 by the HP1 chromo domain // Nature. 2001. V. 410. № 6824. P. 120−124.
Bantignies F., Grimaud C., Lavrov S., Gabut M., Cavalli G. Inheritance of Polycomb-dependent chromosomal interactions in Drosophila // Genes Dev. 2003. V*. 17. № 19. P. 2406−2420.
Belyaeva E.S., Andreyeva E.N., Belyakin S.N., Volkova E.I., Zhimulev I.F. Intercalary heterochromatin in polytene chromosomes of Drosophila melanogaster // Chromosoma. 2008. V. 117. № 5. P. 411−418.
Belyakin S.N., Christophides G.K., Alekseyenko A.A., Kriventseva E.V., Belyaeva E.S., Nanayev R.A., Makunin I.V., Kafatos F.C., Zhimulev I.F. Genomic analysis of
Drosophila chromosome underreplication reveals a link between replication control and* transcriptional territories // Proc NatlAcad Sci U S A. 2005. V. 102. № 23. P. 8269−8274.
Belyakin S.N., Babenko V.N., Maksimov D.A., Kvom E.Z., Belyaeva E. S: Zhimulev I.F. Gene density profile reveals the markup of late replicated domains in Drosophila melanogaster genome // Nucleic Acids Res. 2010 (В1 печати).
Berezney R., Dubey D.D., Huberman J.A. Heterogeneity of eukaryotic replicons, replicon clusters, and replication foci // Chromosoma. 2000.- V. 108. № 8. P. 471−484.
Bi X., Broach J.R. Chromosomal boundaries in S. cerevisiae // Curr Opin Genet Dev. 2001. V. 11. № 2. P. 199−204.
Bielinsky A.K., Gerbi S.A. Where it all starts: eukaryotic origins of DNA replication // J Cell Sci. 2001. V. 114. № Pt 4. P. 643−651.
Biessmann H., Prasad S., Walter M.F., Mason J.M. Euchromatic and heterochromatic domains at Drosophila telomeres // Biochem Cell. Biol". 2005. V. 83. № 4. P. 477−485.
Boutanaev A.M., Kalmykova A.I., Shevelyov Y.Y., Nurminsky D.I. Large clusters of co-expressed genes in the Drosophila genome // Nature.1 2002. V. 420. № 6916. P. 666 669.
Bridges C.B. A revised map of the salivary gland X-chromosome of Drosophila melanogaster // J Hered. 1938. V. 29. P. 11−13.
Bridges P.N. A revised map of the left limb of the third chromosome of Drosophila melanogaster // J Hered. 1941. V. 32. P. 64−65.
Brinton B.T., Caddie M.S., Heintz N.H. Position and orientation-dependent effects of a eukaryotic Z-triplex DNA motif on episomal DNA replication in COS-7 cells // J Biol Chem. 1991. V. 266. № 8. P. 5153−5161.
Biihler M., Verdel A., Moazed D. Tethering RITS to a nascent transcript initiates RNAi- and heterochromatin-dependent gene silencing // Cell. 2006. V. 125. № 5. P. 873 886.
Byrd K.N., Shearn A. ASH1, a drosophila trithorax group protein, is required for methylation of lysine 4 residues omhistone H3 // Proc Natl Acad. Sci USA. 2003. V. 100. № 20. P. 11 535−11 540.
Cao R., Tsukada Y., Zhang Y. Role of Bmi-1 and RinglA in H2A ubiquitylation and Hox gene silencing // Mol Cell. 2005. V. 20. № 6. P. 845−854.
Carrington E.A., Jones R.S. The drosophila Enhancer of zeste gene encodes a chromosomal protein: examination of wild-type and mutant protein distribution // Development. 1996. V: 122. № 12! P. 4073−4083.
Cavalli G. Chromatin as a eukaryotic template of genetic information // Curr Opin Cell Biol. 2002. V. 14. № 3. P. 269−278.
Corpet A., Almouzni G. Making copies of chromatin: the challenge of nucleosomal organization and epigenetic information // Trends Cell Biol. 2009. V. 19. № 1. P" 29−41.
Craig J.M. Heterochromatin—many flavours, common themes // Bioessays. 2005. V. 27. № l.P. 17−28.
Dej K.J., Spradling A.C. The endocycle controls nurse cell polytene chromosome structure during Drosophila oogenesis // Development. 1999. V. 126. № 2. P. 293−303.
Delattre M., Spierer A., Jaquet Y., Spierer P. Increased expression of drosophila Su (var)3−7 triggers Su (var)3−9-dependent heterochromatin formation // J Cell Sci. 2004. V. 117. № Pt 25. P. 6239−6247.
Dellino G.I., Schwartz Y.B., Farkas G., McCabe D., Elgin S.C., Pirrotta V. Poly comb silencing blocks transcription initiation // Mol Cell. 2004. V. 13. № 6. P. 887 893.
Dimitri P., Junakovic N., Area B. Colonization of heterochromatic genes- by transposable elements in Drosophila II Mol Biol Evol. 2003. V. 20. № 4. p. 503−512.
Dimitri P., Corradini N., Rossi F., Verni F. The paradox of functional' hcterochromatin // Bioessays. 2005. V. 27. № 1. P. 29−41.
Djupedal Ii, Ekwall K. Epigenetics: heterochromatin meets RNAi // Cell1 Res. 2009, V. 19. № 3. P.' 282−295.
Dorman E.R., Bushey A.M., Corces V.G. The role of insulator elements-in large-scale chromatin structure in interphase // Semin Cell Dev Biol. 2007. V. 18. № 5. P. 682 690.
Drouin R., Holmquist G.P., Richer C.L. High-resolution, replication bands compared with morphologic G- and R-bands // Adv Hum Genet. 1994. V. 22. № 47−115.
Drysdale R.A., Crosby M.A. FlyBase: genes and gene models // Nucleic Acids Res.2005. V. 33. № Database issue. P. D390−395.
Ebert A., Schotta G., Lein S., Kubicek S., Krauss V., Jenuwein T., Reuter G. Su (var) genes regulate the balance between euchromatin and heterochromatin in Drosophila II Genes Dev. 2004. V. 18. № 23. P. 2973−2983.
Eissenberg J.C., Ge Y.W., Hartnett T. Increased phosphorylation of HP1, a heterochromatin-associated protein of Drosophila, is correlated with heterochromatin assembly // J Biol Chem. 1994. V. 269. № 33. P. 21 315−21 321.
Enomoto S., Berman J. Chromatin assembly factor I contributes to the maintenance, but not the re-establishment, of silencing at the yeast silent mating loci // Genes Dev. 1998. V. 12. № 2. P. 219−232.
Falbo K.B., Shen X. Chromatin remodeling in DNA replication // J Cell Biochem.2006. V. 97. № 4. P. 684−689.
Fanti L., Berloco M., Piacentini L., Pimpinelli S. Chromosomal distribution of heterochromatin protein 1 (HP1) in Drosophila: a cytological map of euchromatic HP1 binding sites // Genetica. 2003. V. 117. № 2−3. P. 135−147.
Farazi T.A., Juranek S.A., Tuschl T. The growing catalog of small RNAs and their association with distinct Argonaute/Piwi family members // Development. 2008. V. 135. № 7. P. 1201−1214.
Fedorova E., Zink D. Nuclear architecture and gene regulation // Biochim Biophys Acta. 2008. V. 1783. № 11. P. 2174−2184.
Fedorova E., Sadoni N., Dahlsveen I.K., Koch J., Kremmer E., Eick D., Paro R., Zink D. The nuclear organization of Polycomb/Trithorax group response elements in larval tissues of Drosophila melanogaster II Chromosome Res. 2008. V. 16. № 4. P. 649−673.
Fischle- W., Wang Y., Jacobs S.A., Kim Y., Allis C.D., Khorasanizadeh S. Molecular basis for the discrimination of repressive methyl-lysine marks in histone H3 by Polycomb and HP1 chromodomains // Genes Dev. 2003. V. 17. № 15. P. 1870−1881.
Folco H.D., Pidoux A.L., Urano T., Allshire R.C. Heterochromatiirand RNAi are required to establish CENP-A chromatin at centromeres // Science. 2008. V. 319i № 5859. P. 94−97.
Font-Burgada J., Rossell D., Auer H., Azorin F. Drosophila HPlc isoform interacts with the zinc-finger proteins WOC and Relative-of-WOC to regulate gene expression // Genes Dev. 2008. V. 22: № 21. P. 3007−3023.
Friedman K.L., Diller J.D., Ferguson B.M., Nyland S.V., Brewer B.J., Fangman W.L. Multiple determinants controlling activation of yeast replication origins late in S phase // Genes Dev 1996. V. 10. № 13. P. 1595−1607.
Fyodorov D.V., Blower M.D., Karpen G.H., Kadonaga J.T. Acfl confers unique activities to ACF/CHRAC and promotes the formation rather than disruption of chromatin in vivo // Genes Dev. 2004. V. 18. № 2. P. 170−183.
Gierman H.J., Indemans M.H., Koster J'., Goetze S., Seppen J., Geerts D., van Driel R., Versteeg R. Domain-wide regulation of gene expression in the human genome // Genome Res. 2007. V. 17. № 9. P. 1286−1295.
Gilbert D.M. Nuclear position leaves its mark on replication timing // J Cell Biol. 2001. V. 152. № 2. P. Fll-15.
Gilbert N., Boyle S., Sutherland H., de Las Heras J., Allan J., Jenuwein T., Bickmore W.A. Formation of facultative heterochromatin in the absence of HP1 // Embo J. 2003. V. 22. № 20. P. 5540−5550.
Gilbert N., Boyle S., Fiegler H., Woodfine K., Carter N.P., Bickmore W.A. Chromatin architecture of the human genome: gene-rich domains are enriched in open chromatin fibers // Cell. 2004. V. 118. № 5. P. 555−566.
Glaser R.L., Leach T.J., Ostrowski S.E. The structure of heterochromatic DNA is altered in polyploid cells of Drosophila melanogaster II Mol Cell Biol. 1997. V. 17. № 3. P. 1254−1263.
Gowher H., Leismann 0. s, Jeltsch A. DNA of Drosophila melanogaster contains 5-methylcytosine 11 Embo J. 2000. V. 19. № 24. P. 6918−6923.
Grewal S.I., Moazed D. Heterochromatin and epigenetic control of gene expression-// Science. 2003. V. 301. № 5634. P. 798−802.
Grewal S.I., Jia S. Heterochromatin revisited //Nat Rev Genet. 2007. V. 8. № 1. P. 35−46.
Grimaud C., Negre N., Cavalli G. From genetics to epigenetics: the tale of Polycomb groupand trithorax group genes // Chromosome Res. 2006a. V. 14. № 4. P. 363 375.
Grimaud C., Bantignies F., Pal-Bhadra M, Ghana P, Bhadra-U., Cavalli G. RNAi components are required for nuclear clustering of Polycomb group response elements // Cell. 2006b. V. 124. № 5. P. 957−971.
Hammond M.P., Laird C.D. Chromosome structure and DNA replication in. nurse and follicle cells of Drosophila melanogaster // Chromosoma. 1985. V. 91. № 3−4. P. 267 278.
Hansen K.H., Bracken A.P., Pasini D., Dietrich N., Gehani S.S., Monrad A., Rappsilber J., Lerdrup M., Helin K. A model for transmission of the H3K27me3 epigenetic mark //Nat Cell Biol. 2008. V. 10. № 11. P. 1291−1300.
Havas K., Whitehouse I., Owen-Hughes T. ATP-dependent chromatin remodeling activities // Cell Mol Life Sci. 2001. V. 58. № 5−6. P. 673−682.
Hayden C.A., Bosco G. Comparative genomic analysis of novel conserved peptide upstream open reading frames in Drosophila melanogaster and other dipteran species // BMC Genomics. 2008. V. 9. № 61.
Hediger F., Gasser S.M. Heterochromatin protein 1: don’t judge the book by its cover! // Gurr Opin Genet Dev. 2006. V. 16. № 2. P. 143−150.
Heitz E. Das Heterochromatin der Moose //Jb Wiss Bot. 1928. V. 69. P. 762−818.
Heun P., Laroche T., Raghuraman M.K., Gasser S.M. The positioning and dynamics of origins of replication in the budding yeast nuclcus // J Cell Biol. 2001. V. 152. № 2. P. 385−400.
Hines K.A., Cryderman D.E., Flannery K.M., Yang H., Vitalini M.W., Hazelrigg T., Mizzen C.A., Wallrath L.L. Domains of heterochromatin protein 1 required for Drosophila melanogaster heterochromatin spreading // Genetics. 2009. V. 182. № 4. P. 967 977.
Hiragami K., Festenstein R. Heterochromatin protein 1: a pervasive controlling influence II Cell Mol Life Sci. 2005. V. 62. № 23. P. 2711−2726.
Hiratani I., Ryba T., Itoh M., Yokochi T., Schwaiger M., Chang C.W., Lyou Y., Townes T.M., Schiibeler D., Gilbert DM. Global reorganization of replication domains during embryonic stem cell differentiation // PLoS Biol. 2008. V. 6. № 10. P. e245.
Hiratani I., Gilbert D. IvL Replication timing’as an epigenetic. mark // Epigenetics. 2009. V. 4. № 2. P. 93−97.
Hochstrasser M., Sedat J.W. Three-dimensional organization of Drosophila melcmogaster interphase nuclei. I. Tissue-specific aspects of polytene nuclear architecture // J Cell’Biol. 1987. V. 104. № 6. P. 1455−1470.
HO.Huisinga K.L., Elgin S.C. Small RNA-directed heterochromatin formation in the context of development: what flies might learn from fission -yeast // Biochim Biophys Acta. 2009. V. 1789. № 1. P. 3−16.
Hurst L.D., Pal C., Lercher M.J. The evolutionary dynamics of eukaryotic gene order // Nat Rev Genet. 2004. V. 5. № 4. P. 299−310.
Huvet M., Nicolay S., Touchon M., Audit B., d’Aubenton-Carafa Y., Arneodo A., Thermes C. Human gene organization driven by the coordination of replication and transcription // Genome Res. 2007. V. 17. № 9. P. 1278−1285.
James T.C., Elgin S.C. Identification of a nonhistone chromosomal protein associated with heterochromatin in Drosophila melanogaster and its gene // Mol Cell Biol. 1986. V. 6. № 11. P. 3862−3872.
James T.C., Eissenberg J.C., Craig C., Dietrich V., Hobson A., Elgin S.C. Distribution patterns of HP1, a heterochromatin-associated nonhistone chromosomal protein of Drosophila II Eur J Cell Biol. 1989. V. 50. № 1. P. 170−180.
Johansson A.M., Stenberg P., Pettersson F., Larsson J. POF and HP1 bind expressed exons, suggesting a balancing mechanism for gene regulation // PLoS Genet. 2007. V. 3.№ 11. P. e209.
Jones D.O., Cowell I.G., Singh P. B! Mammalian chromodomain proteins: their role in genome organisation and expression // Bioessays. 2000. V. 22. № 2. P. 124−137.
Kadauke S., Blobel G.A. Chromatin loops in gene regulation // Biochim Biophys Acta. 2009. V. 1789. № 1. P. 17−25.
Kalmykova A.I., Nurminsky D.I., Ryzhov D.V., Shevelyov Y.Y. Regulated chromatin domain comprising cluster of co-expressed genes in Drosophila melanogaster // Nucleic Acids Res. 2005. V. 33. № 5. P. 1435−1444.
Kanduri C., Whitehead J., Mohammad F. The long and the short of it: RNA-directed chromatin asymmetry in mammalian’X-chromosome inactivation // FEBS Iiett. 2009. V. 583. № 5. P: 857−864.
Karpen G.H., Spradling A.C. Reduced DNA polytenization of a minichromosome region undergoing position-effect variegation in Drosophila II Cell. 1990. V. 63. № 1. P. 97 107.
Kaufmann B.P. Distribution of induced breaks along the X-chromosome of Drosophila melanogaster I/ Proc Natl AcadSci USA. 1939. V. 25. № 11. P: 571−577.
Kavi H.H., Fernandez Hi, Xie W., Birchler J.A. Genetics and biochemistry of RNAi m Drosophila II Curr Top Microbiol Immunol. 2008. V. 320. № 37−75.
Kimura' A., Horikoshi Mi Partition*of distinct chromosomal regions: negotiable border and fixed border // Genes Cells. 2004. V. 9. № 6. P. 499−508.
Kloc A., Martienssen R. RNAi, heterochromatin and the cell cycle // Trends Genet. 2008. V. 24. № 10. P. 511−517.
Kloc A., Zaratiegui M., Nora E., Martienssen R. RNA interference guides histone modification during the S phase of chromosomal replication // Curr Biol. 2008. V. 18. № 7. P. 490−495.
Klose R.J., Yamane K., Bae Y., Zhang D., Erdjument-Bromage H., Tempst P., Wong J., Zhang Y. The transcriptional repressor JHDM3A demethylates trimethyl histone H3 lysine 9 and lysine 36 // Nature. 2006. V. 442. № 7100. P. 312−316.
Koryakov D.E., Reuter G., Dimitri P., Zhimulev I.F. The SuUR gene influences the distribution of heterochromatic proteins HP1 and SU (VAR)3−9 on nurse cell polytene chromosomes of Drosophila melanogaster II Chroinosoma. 2006. V. 115. № 4. P. 296−310.
Koryakov D.E., Ebert A., Walther M., Lein S., Reuter G., Zhimulev I.F. The SUUR protein is involved in binding of SU (VAR)3−9 and methylation of H3K9 and H3K27 in chromosomes of Drosophila melanogaster I 12 010 (В печати).
Kramer J.A., McCarrey J.R., Djakiew D., Krawetz S.A. Differentiation: the selective potentiation of chromatin domains // Development. 1998. V. 125. № 23. P. 47 494 755.
Kumaran R.I., Thakar R., Spector D.L. Chromatin dynamics and gene positioning // Cell. 2008. V. 132. № 6. P. 929−934.
Kunert N., Marhold J., Stanke J., Stach D., Lyko F. A Dnmt2-like protein mediates DNA methylation^Drosophila II Development. 2003. V. 130. № 21. P. 5083−5090.
Kwong C., Adryan B., Bell I., Meadows L., Russell S., Manak J.R., White R. Stability and dynamics of polycomb target sites in Drosophila development // PLoS Genet. 2008. V. 4. № 9. P. el000178.
Labrador M., Corces V.G. Setting the boundaries of chromatin domains and nuclear organization // Cell. 2002. V. 111. № 2. P. 151−154.
Lakhotia S.C., Tiwari P.K. Replication in Drosophila chromosomes. XI. Differences in temporal order of replication in two polytene cell types in Drosophila nasnta I I Chromosoma. 1984. V. 89. P. 212−217.
Leach T.J., Chotkowski H.L., Wotring M.G., Dilwith R.L., Glaser R.L. Replication of heterochromatin and structure of polytene chromosomes // Mol Cell Biol. 2000a. V. 20. № 17. P. 6308−6316.
Leach T.J., Mazzeo M., Chotkowski H.L., Madigan J.P., Wotring M.G., Glaser R.L. Histone H2A. Z is widely but nonrandomly distributed in chromosomes of Drosophila melanogaster IIJ Biol Chem. 2000b. V. 275. № 30. P. 23 267−23 272.
Lee C.S. A possible role of repetitious DNA in recombinatory joining during chromosome rearrangement in Drosophila melanogaster II Genetics. 1975. V. 79. № 3. P. 467−470.
Lee E.H., Kornberg A., Hidaka M., Kobayashi T., Horiuchi T. Escherichia coli replication termination protein impedes the action of helicases // Proc Natl Acad Sci USA. 1989. V. 86. № 23. P. 9104−9108.
Lee J.M., Sonnhammer E.L. Genomic gene clustering analysis of pathways in eukaryotes // Genome Res. 2003. V. 13. № 5. P. 875−882.
Li Y., Kirschmann D.A., Wallrath' L.L. Does heterochromatin protein-1 always follow code? // Proc Natl Acad Sci USA. 2002. V. 99 Suppl 4. № 16 462−16 469.
Lilly M.A., Spradling A.C. The Drosophila endocycle is controlled by Cyclin E and lacks a checkpoint ensuring S-phase completion // Genes Dev. 1996. V. 10. № 19. P! 2514−2526.
Lindsley, D.L., Zimm, G.G. The Genome of Drosophila melanogaster. Academic Press, 1992. P. 1−1133.
Liu L.P., Ni J.Q., Shi Y.D., Oakeley E.J., Sun F.L. Sex-specific role of Drosophila melanogaster HP1 in regulating chromatin structure and gene transcription // Nat Genet. 2005. V. 37. № 12. Pi 1361−1366.
Loupart M.L., Krause S.A., Heck M.S. Aberrant replication timing induces defective chromosome condensation in Drosophila ORC2 mutants // Curr Biol. 2000. V. 10. № 24. P. 1547−1556.
Lusser A., Kadonaga J.T. Chromatin remodeling by ATP-dependent molecular machines // Bioessays. 2003. V. 25. № 12. P. 1192−1200.
MacAlpine D.M., Rodriguez H.K., Bell S.P. Coordination of replication and, transcription along a Drosophila chromosome // Genes Dev. 2004. V. 18. № 24. P. 30 943 105.
Mackay W.J., Bewley G.C. The genetics of catalase in Drosophila melanogaster: isolation and characterization of acatalasemic mutants // Genetics. 1989. V. 122. № 3. P. 643−652.
Madigan J.P., Chotkowski H.L., Glaser R.L. DNA double-strand break-induced phosphorylation of Drosophila histone variant H2Av helps prevent radiation-induced apoptosis //Nucleic Acids Res. 2002. V. 30. № 17. P. 3698−3705.
Maison C., Almouzni G. HP1 and the dynamics of heterochromatin maintenance // Nat Rev Mol Cell Biol. 2004. V. 5. № 4. P. 296−304.
Makunin I.V., Volkova E.I., Belyaeva E.S., Nabirochkina E.N., Pirrotta V., Zhimulev I.F. The Drosophila Suppressor of Underreplication protein binds to late-replicating regions of polytene chromosomes // Genetics. 2002. V. 160. № 3. P. 1023−1034.
Marhold J., Kramer K., Kremmer E., Lyko F. The Drosophila MBD2/3 protein mediates interactions between the MI-2 chromatin complex and CpT/A-methylated DNA // Development. 2004. V. 131. № 24. P. 6033−6039.
Maside X., Assimacopoulos S., Charlesworth B. Fixation of transposable elements in the Drosophila melanogaster genome // Genet Res. 2005. V. 85. № 3. P. 195−203.
Matranga C., Zamore P.D. Small silencing RNAs // Curr Biol. 2007. V. 17. № 18. P. R789−793.
Michalak P. Coexpression, coregulation, and cofunctionality of neighboring genes in eukaryotic genomes // Genomics. 2008. V. 91. № 3. P. 243−248.H
Misteli T. Spatial positioning- a new dimension in genome function // Cell. 2004. V. 119. № 2. P. 153−156.
Muchardt C., Guilleme M., Seeler J.S., Trouche D., Dejean A., Yaniv M. Coordinated methyl and RNA binding is required for heterochromatin localization of mammalian HP 1 alpha // EMBO Rep. 2002. V. 3. № 10. P. 975−981.
Miiller J., Kassis J.A. Polycomb response elements and targeting of Polycomb group proteins in Drosophila // Curr Opin Genet Dev. 2006. V. 16. № 5. P. 476−484.
Murzina N., Verreault A., Laue E., Stillman B. Heterochromatin dynamics in mouse cells: interaction between chromatin assembly factor 1 and HP1 proteins // Mol Cell. 1999. V. 4. № 4. P. 529−540.
Nakatani Y., Tagami H., Shestakova E. How is epigenetic information on chromatin inherited after DNA replication? // Ernst Schering Res Found Workshop. 2006. V. № 57. P. 89−96.
Narlikar G.J., Fan H.Y., Kingston R.E. Cooperation between complexes that regulate chromatin structure and transcription // Cell. 2002. V. 108. № 4. P. 475−487.
Negre N., Hennetin J., Sun L.V., Lavrov S., Bellis M., White K.P., Cavalli G. Chromosomal distribution of PcG proteins during Drosophila development // PLoS Biol. 2006. V. 4. № 6. P. el70.
Nielsen A.L., Sanchez G., Ichinose H., Cervino M., Lerouge T., Chambon^ P., Losson R5. Selective interaction between the chromatin-remodeling factor BRG1 and the heterochromatin-associated protein. HP 1 alpha // EmboJ. 2002. V. 21. № 21. P. 5797−5806:"
Noma K., Sugiyama T., Cam H., Verdel A., Zofall M., JiaS., Moazed D., Grewal S. Ii RITS acts in cis to promote RNA interference-mediated transcriptional and' post-transcriptional silencing // Nat Genet. 2004. V. 36. № 11. P. 1174−1180.
Orlando V., Jane E.P., Chinwalla V., Harte P.J., Paro R. Binding of trithorax and. Polycomb* proteins to the bithorax complex: dynamic changes during early Drosophila embryogenesis.// Embo J. 1998: V. 17. № 17. P: 5141−5150:
Pal-Bhadra? M., Bhadra U., Birchler J.A. Cosuppression in Drosophila: gene silencing of Alcohol dehydrogenase by white-Adh transgenes is Polycomb dependent // Cell. 1997. V. 90. № 3. P. 479−490.
Pal-Bhadra M., Bhadra U., Birchler J.A. RNAi related mechanisms affect both transcriptional and posttranscriptional transgene silencing in Drosophila // Mol Cell. 2002. V. 9. № 2. P. 315−327.
Pal-Bhadra M., Leibovitch B.A., Gandhi S.G., Rao M., Bhadra U., Birchler J.A., Elgin S.C. Heterochromatic silencing and HP1 localization in Drosophila are dependent on the RNAi machinery // Science. 2004. V. 303. № 5658. P. 669−672.
Palstra R.J., Simonis M., Klous P., Brasset E., Eijkelkamp B., de Laat W. Maintenance of long-range DNA interactions after inhibition of ongoing RNA polymerase II transcription // PLoS One. 2008. V. 3. № 2. P. el661.
Peng J.C., Karpen G.H. H3K9 methylation and RNA interference regulate nucleolar organization and repeated DNA stability // Nat Cell Biol. 2007. V. 9. № 1. P. 2535.
Pepper J.W. The evolution of evolvability in genetic linkage patterns // Biosystems. 2003. V. 69. № 2−3. P. 115−126.
Pirrotta V., Rastelli L. White gene expression, repressive chromatin domains and homeotic gene regulation in Drosophila II Bioessays. 1994. V. 16. № 8. P. 549−556.
Pirrotta V. PcG complexes and chromatin silencing I I Curr Opin Genet Dev. 1997. V. 7. № 2. P. 249−258.
Pirrotta V., Poux S., Melfi R*., Pilyugin M. Assembly of Polycomb complexes and silencing mechanisms // Genetica. 2003. V. 117. № 2−3. P. 191−197.
Pirrotta V., Gross D.S. Epigenetic silencing mechanisms in budding yeast and, fruit fly: different paths, same destinations // Mol Cell. 2005. V. 18. № 4. Pi 395−398.
Pokholkova G.V., Makunin I.V., Belyaeva E.S., Zhimulev I.F. Observations on the induction of position effect variegation of euchromatic genes in Drosophila melanogaster //• Genetics. 1993. V. 134. № 1. P. 231−242.
Poux S., Melfi R., Pirrotta V. Establishment of Polycomb silencing requires a transient interaction between PC and ESC // Genes Dev. 2001. V. 15. № 19. P. 2509−2514.
Probst A.V., Dunleavy E., Almouzni G. Epigenetic inheritance during the cell cycle // Nat Rev Mol Cell Biol. 2009. V. 10. № 3. P. 192−206.
Purmann A., Toedling J., Schueler M., Carninci P., Lehrach H., Hayashizaki Y., Huber W., Sperling S. Genomic organization of transcriptomes in mammals: Coregulation and cofunctionality // Genomics. 2007. V. 89. № 5. P. 580−587.
Quivy J.P., Roche D., Kirschner D., Tagami H., Nakatani Y., Almouzni G. A CAF-1 dependent pool of HP1 during heterochromatin duplication // Embo J. 2004. V. 23. № 17. P. 3516−3526.
Raghuraman M.K., Brewer B.J., Fangman W.L. Cell cycle-dependent establishment of a late replication program // Science. 1997. V. 276. № 5313. P. 806−809.
Rastelli L., Chan C.S., Pirrotta V. Related chromosome binding sites for zeste, suppressors of zeste and Polycomb group proteins in Drosophila and their dependence on Enhancer of zeste function II Embo J. 1993. V. 12. № 4. P. 1513−1522.
Reddy K.L., Zullo J.M., Bertolino E., Singh H. Transcriptional repression mediated by repositioning of genes to the nuclear lamina // Nature. 2008. V. 452. № 7184. P. 243 247.
Redfern C.P. DNA replication in polytene chromosomes: similarity of termination patterns in somatic and germ-line derived polytene chromosomes of Anopheles stephensi Liston {Diptera: Culicidae) // Chromosoma. 1981. V. 84. № 1. P. 33−47.
Remus D., Beall E.L., Botchan MIR. DNA topology, not DNA sequence, is a critical determinant for Drosophila ORC-DNA binding // Embo J. 2004. V. 23. № 4. P. 897 907.
Richards E.J., Elgin S.C. Epigenetic codes for heterochromatin formation and silencing: rounding up the usual suspects // Cell. 2002. V. 108. № 4. P: 489−500.
Riddle N.C., Shaffer C.D., Elgin S.C. A lot about a little dot lessons learned from Drosophila melanogaster chromosome 4 // Biochem Cell Biol. 2009. V. 87. № l.P. 229 241.
Ringrose L., Ehret H., Paro R. Distinct contributions of histone H3 lysine 9 and'27 methylation to locus-specific stability of polycomb complexes // Mol Cell. 2004. V. 16. № 4. P. 641−653.
Ringrose L., Paro R. Polycomb/Trithorax response elements and epigenetic memory of cell identity // Development. 2007. V. 134. №-2. P. 223−232.
Royzman I., Orr-Weaver T.L. S phase and differential DNA replication during Drosophila oogenesis // Genes Cells. 1998. V. 3. № 12. P. 767−776.
Royzman I., Hayashi-Hagihara A., Dej K.J., Bosco G., Lee J.Y., Orr-Weaver T.L. The E2 °F cell cycle regulator is required for Drosophila nurse cell DNA replication and apoptosis // Mech Dev. 2002. V. 119. № 2. P. 225−237.
Rusche L.N., Lynch P.J. Assembling heterochromatin in the appropriate places: A boost is needed // J Cell Physiol. 2009. V. 219. № 3. P. 525−528.
Savitsky M., Kravchuk O., Melnikova L., Georgiev P. Heterochroinatin protein 1 is involved in control of telomere elongation in Drosophila melanogaster // Mol Cell Biol. 2002. V. 22. № 9. P. 3204−3218.
Schmitt S., Prestel M., Paro R. Intergenic transcription through a polycomb group response element counteracts silencing // Genes Dev. 2005. V. 19. № 6. P. 697−708.
Schneider R., Grosschedl R. Dynamics and interplay of nuclear architecture, genome organization, and gene expression'// Genes Dev. 2007. V. 21. № 23. P. 3027−3043.
Schotta G., Ebert A., Krauss V., Fischer A., Hoffmann J., Rea S., Jenuwein T., Dorn R., Reuter G. Central role of Drosophila SU (VAR)3−9 in histone H3-K9 methylation and heterochromatic gene silencing // Embo J. 2002. V. 21. № 5. P: 1121−1131.
Schotta G., Ebert A., Reuter G. SU (VAR)3−9 is a conserved key function in heterochromatic gene silencing // Genetica. 2003. V. 117. № 2−3. P. 149−158.
Schotta G., Lachner M., Sarma K., Ebert A., Sengupta R., Reuter G., Reinberg D., Jenuwein T. A silencing pathway to induce H3-K9 and H4-K20 trimethylation at constitutive heterochromatin // Genes Dev. 2004. V. 18. № 11. P. 1251−1262.
Schiibeler D., Scalzo D., Kooperberg C., van Steensel B., Delrow J., Groudine M. Genome-wide DNA replication profile for Drosophila melanogaster: a link between transcription and replication timing //Nat Genet. 2002. V. 32. № 3. P. 438−442.
Schuettengruber B., Ganapathi M., Leblanc B., Portoso M., Jaschek R., Tolhuis B., van Lohuizen M., Tanay A., Cavalli G. Functional anatomy of polycomb and trithorax chromatin landscapes in Drosophila embryos // PLoS Biol. 2009. V. 7. № 1. P. el3.
Schulze S.R., McAllister B.F., Sinclair D.A., Fitzpatrick K.A., Marchetti M., Pimpinelli S., Honda B.M. Heterochromatic genes in Drosophila: a comparative analysis of two genes // Genetics. 2006. V. 173. № 3. P. 1433−1445.
Schwaiger M., Stadler M.B., Bell O., Kohler H., Oakeley E.J., Schiibeler D. Chromatin state marks cell-type- and gender-specific replication of the Drosophila genome // Genes Dev. 2009. V. 23. № 5. P. 589−601.
Schwartz Y.B., Kahn T.G., Nix D.A., Li X.Y., Bourgon R., Biggin M., Pirrotta V. Genome-wide analysis of Polycomb targets in Drosophila melanogaster // Nat Genet. 2006. V. 38. № 6. P. 700−705.
Schwartz Y.B., Pirrotta V. Polycomb silencing mechanisms and the management of genomic programmes //Nat Rev Genet. 2007. V. 8. № 1. P. 9−22.
Scully R., Xie A. In my end is my beginning: control of end resection and DSBR pathway 'choice' by cyclin-dependent kinases // Oncogene. 2005. V. 24. № 17. P. 28 712 876.
Semeshin V.F., Baricheva E.M., Belyaeva E.S., Zhimulev I.F. Electron microscopical analysis of Drosophila polytene chromosomes. II. Development of complex puffs // Chromosoma. 1985. V. 91. № 3−4. P: 210−233.
Seum C., Delattre M., Spierer A., Spierer P. Ectopic HP1 promotes chromosome loops and variegated silencing in Drosophila II Embo J. 2001. V. 20. № 4. P. 812−818.
Shanower G.A./ Muller M., Blanton J.L., Honti V., Gyurkovics H., Schedl P. Characterization of the grappa gene, the Drosophila histone H3 lysine 79 methyltransferase // Genetics. 2005. V. 169. № 1. P. 173−184.
Shao Z., Raible F., Mollaaghababa R., Guyon J.R., Wu C.T., Bender W., Kingston R.E. Stabilization of chromatin structure by PRC1, a Polycomb complex // Cell. 1999. V. 98. № l.P. 37−46.
Shibahara K., Stillman B. Replication-dependent marking of DNA by PCNA facilitates CAF-l-coupled inheritance of chromatin // Cell. 1999. V. 96. № 4. P. 575−585.
Shinomiya T., Ina S. DNA replication of histone gene repeats in Drosophila melanogaster tissue culture cells: multiple initiation sites and replication pause sites // Mol Cell Biol. 1993. V. 13. № 7. P. 4098−4106.
Shirahige K., Hori Y., Shiraishi K., Yamashita M., Takahashi K., Obuse C., Tsurimoto T., Yoshikawa H. Regulation of DNA-replication origins during cell-cycle progression //Nature. 1998. V. 395. № 6702. P. 618−621.
Shukla A., Chaurasia P., Bhaumik S.R. Histone methylation and ubiquitination with their cross-talk and roles in gene expression and stability // Cell Mol Life Sci. 2009. V. 66. № 8. P. 1419−1433.
Sinha P., Mishra A., Lakhotia S.C. Chromosomal organization* of Drosophila tumors. I. Polytene chromosome organization and' DNA* synthesis in- ovarian pseudonurse cells in otu mutants of Drosophila melanogaster // Chromosoma. 1987. V. 95. P: 108−1-16.
Smith A.V., Orr-Weaver T.L. The regulation of the cell' cycle during Drosophila embryogenesis: the transition to polyteny // Development. 1991. V. 112'. № 4. P. 997−1008.
Snyder A.R. Silent no more: expression of RNA from- telomeres may regulate telomere length // Cancer Biol Ther. 2008. V. 7. № 5-, P: 619−621.
Spellman P.T., Rubin G.M. Evidence for large domains of similarly expressed genes in the Drosophila genome // J Biol. 2002. V. 1. № 1. P. 5.
Stabell M., Eskeland R.,. Bjorkmo M., Larsson. Jl, Aalen R.B., Imhof A., Lambertsson A. The Drosophila G9a gene, encodes a multi-catalytic histone methyltransferase required for normal development // Nucleic Acids Res. 2006. V. 34. № 16. P- 4609−4621.
Stankunas K., Berger J., Ruse C., Sinclair D.A., Randazzo F., Brock H.W. The enhancer of polycomb gene of Drosophila encodes a chromatin protein conserved in yeast and mammals // Development. 1998. V. 125: № 20. P. 4055−4066.
Stark A., Brennecke J., Russell R.B., Cohen S.M. Identification of Drosophila MicroRNA targets // PLoS Biol. 2003^ V. I. № 3. p. E60.
Stewart M.D., Li J., Wong J. Relationship between histone H3 lysine 9 methylation, transcription repression, and heterochromatin protein 1 recruitment // Mol Cell Biol. 2005. V. 25. № 7. P. 2525−2538.
Strutt H., Cavalli G., Paro R. Co-localization of Polycomb protein and GAGA factor on regulatory elements responsible for the maintenance of homeotic gene expression //Embo J. 1997. V. 16. № 12. P. 3621−3632.
Swaminathan J., Baxter E.M., Corces V.G. The role of histone H2Av variant replacement and histone H4 acetylation in the establishment of Drosophila heterochromatin // Genes Dev. 2005. V. 19. № 1. P. 65−76.
Szutorisz H., Canzonetta C., Georgiou A., Chow C.M., Tora L., Dillon N. Formation of an active tissue-specific chromatin domain initiated by epigenetic marking at the embryonic stem cell stage // Mol Cell Biol. 2005. V. 25. № 5. P. 1804−1820.
Tabancay A.P., Forsburg S.L. Eukaryotic DNA replication in a chromatin context // Curr Top Dev Biol. 2006. V. 76. № 129−184.
Taddei A., Roche D., Sibarita J.B., Turner B.M., Almouzni G. Duplication" and. maintenance of heterochromatin domains // J Cell Biol. 1999. V. 147. № 6. P. 1153−1166.
Thompson M., Haeusler R.A., Good P.D., Engelke D.R. Nucleolar clustering of dispersed tRNA genes // Science. 2003. V. 302. № 5649. P. 1399−1401.
Thon G. Histone modifications: cycling with chromosomal replication // Curr Biol. 2008. V. 18″ № 9. P. R380−382.
Tiwari P.K., Lakhotia S.C. Replication in Drosophila chromosomes. XIII. Comparison of late replicating sites in two polytene cell types in D. Hydei // Genetica. 1984. V. GSi P. 227−234.
Tolhuis B., de Wit E. Muijrers I., Teunissen FT., Talhout W., van Steensel B., vani1. huizen M. Genome-wide profiling of PRC1 and PRC2 Polycomb chromatin binding in 1 Drosophila melanogaster // Nat Genet. 2006. V. 38. № 6. P. 694−699.
Turner B.M. Cellular memory and the histone code // Cell. 2002: V. 111. № 3. p. 285−291.
Verdel A., Jia S., Gerber S., Sugiyama T., Gygi S., Grewal S.I., Moazed D. RNAi-mediated targeting of heterochromatin by the RITS complex // Science. 2004. V. 303. № 5658. P. 672−676.
Vermaak D., Ahmad K., Henikoff S. Maintenance of chromatin states: an open-and-shut case // Curr Opin Cell Biol. 2003. V. 15. № 3. P. 266−274.
Vestner B., Waldmann T., Grass C. Histone octamer dissociation is not required for in vitro replication of simian virus 40 minichromosomes // J Biol Chem. 2000. V. 275. № 11. P. 8190−8195.
Volkova E.I., Zhimulev I.F. Development time of stocks, containing different dosesof Suppressor of underreplication (Su (UR)ES) gene in Drosophila melanogaster // < i Drosophila Inform. Serv. 2001. V. 84. P. 48-^9.
Wallace J.A., Orr-Weaver T.L. Replication of heterochromatin: insights into mechanisms of epigenetic inheritance // Chromosoma. 2005. V. 114. № 6. P. 389−402.
Wang G., Ma A., Chow C.M., Horsley D., Brown N.R., Co well I.G., Singh P.B. Conservation of heterochromatin protein 1 function // Mol Cell Biol. 2000. V. 20. № 18. P. 6970−6983.
Wang L., Brown J.L., Cao R., Zhang Y., Kassis J .A., Jones R.S. Hierarchical recruitment of polycomb group silencing complexes // Mol Cell. 2004a. V. 14. № 5. P. 637 646.
Wang H., Wang L., Erdjument-Bromage H., Vidal M., Tempst P., Jones R.S., Zhang Y. Role of histone H2A ubiquitination in Polycomb silencing // Nature. 2004b. V. 431. № 7010. P. 873−878.
Whetstine J.R., Nottke A., Lan F., Huarte M., Smolikov S., Chen Z., Spooner E., Li E., Zhang G., Colaiacovo M., Shi Y. Reversal of histone lysine trimethylation by the JMJD2 family of histone demethylases // Cell. 2006. V. 125. № 3. P. 467−481.
White K., Grether M.E., Abrams J.M., Young L., Farrell K., Steller H. Genetic control of programmed cell death in Drosophila // Science. 1994. V. 264. № 5159. P. 677 683.
Wing J.P., Karres J.S., Ogdahl J.L., Zhou L., Schwartz L.M., Nambu J.R. Drosophila sickle is a novel grim-reaper cell death activator // Curr Biol. 2002. V. 12. № 2. P. 131−135.
Wintersberger E. Why is there late replication? // Chromosoma. 2000. V. 109. № 5. P. 300−307.
Yasuhara J.C., Wakimoto B.T. Oxymoron no more: the expanding world of heterochromatic genes // Trends Genet. 2006. V. 22. № 6. P. 330−338.
Yasuhara J.C., Wakimoto B.T. Molecular landscape of modified histones in Drosophila heterochromatic genes and euchromatin-heterochromatin transition zones // PLoS Genet. 2008. V. 4. № 1. P. el6.
Yompakdee C., Huberman J.A. Enforcement of late replication origin firing by clusters of short G-rich DNA sequences // J Biol Chem. 2004. V. 279. № 40. P. 4 233 742 344.
Yurlova A.A., Makunin I.V., Kolesnikova T.D., Posukh O.V., Belyaeva E.S., Zhimulev I.F. Conservation of domain structure in-a fast-evolving heterochromatic SUUR protein in drosophilids // Genetics. 2009. V. 183. № 1. P. 119−129.
Zhang J., Xu F., Hashimshony T., Keshet I., Cedar H. Establishment of transcriptional competence in early and late S phase // Nature. 2002. V. 420. № 6912. P. 198−202.
Zhimulev I.F., Semeshin V.F., Kulichkov V.A., Belyaeva E.S. Intercalary heterochromatin in Drosophila. I. Localization and general characteristics // Chromosoma. 1982. V. 87. P. 197−228.
Zhimulev I.F. Polytene chromosomes, heterochromatin, and position effect variegation-// Adv Genet. 1998. V. 37. P. 1−566.
Zhimulev I.F., Belyaeva E.S. Intercalary heterochromatin and genetic silencing // Bioessays. 2003. V. 25. № 11. P. 1040−1051.
Zhimulev I.F., Koryakov D.E. Polytene chromosomes. Chichester: John Wiley & Sons, In: Encyclopedia of life sciences, 2009. 10 c. (http://www.els.net).
Zhou G.L., Xin L., Song W., Di L.J., Liu G., Wu X.S., Liu D.P., Liang C.C. Active chromatin hub of the mouse alpha-globin locus forms in a transcription factory of clustered housekeeping genes // Mol Cell Biol. 2006. V. 26. № 13. P. 5096−5105.
Zink B., Paro R. In vivo binding pattern of a trans-regulator of homoeotic genes in Drosophila melanogaster II Nature. 1989. V. 337. № 6206. P. 468−471.
Zink D., Paro R. Drosophila Polycomb-group regulated chromatin inhibits the accessibility of a trans-activator to its target DNA // Embo J. 1995. V. 14. № 22. P. 56 605 671.

Заполнить форму текущей работой