Диагностика. 
Характеристика, основные симптомы, возбудители, методы диагностики и лечения чумы плотоядных

Многообразие форм проявления болезни нередко затрудняет своевременный диагноз. Его устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, результатов лабораторных исследований, а также патологоанатомических изменений, характерных для данной болезни.

При гематологических исследованиях в начальной стадии болезни обнаруживают выраженную лейкопению, продолжительность которой ярко свидетельствует о степени тяжести поражения лимфатической ткани, ее истощении и разрушении.

Важное значение имеют подробный анамнез и эпизоотологический анализ болезни. При их проведении от владельцев животного получают сведения: об иммунопрофилактике конкретных болезней (тип и состав вакцин, сроки и условия вакцинации), возможные источники инфекции и механизм передачи возбудителя болезни, когда, как и при каких обстоятельствах она проявилась, условия кормления, ухода и содержания животного и др.

Микроскопия телец-включений. Цитоплазматические и реже внутирядерные тельца-включения являются патогномоническими для ЧС. Для обнаружения телец-включений предложен метод окраски мазков гамотоксилином Делафильда с эозином.

На фиксированный или нефиксированный препарат пипеткой наносят краску. Затем ее сливают (остатки краски можно смыть водопроводной водой или удалить фильтровальной бумагой). Окрашенный мазок подсушивают на воздухе и просматривают под иммерсионной системой микроскопа. Крупные включения видны при среднем увеличении. Парафиновые срезы, после их депарафинирования, окрашивают 3−6 мин. Ядра эпителиальных клеток окрашиваются в сине-фиолетоый цвет, цитоплазма в светло-сиреневый, вирусные тельца-включения в ярко-красный или малиновый. Включения расположены в цитоплазме или внеклеточно. Величина их — от мельчайших частиц до размера ядра клетки, количество — от единичных до 10 и более в одной клетке. Они могут быть круглые, овальные, полиморфные. Имеют четкие ровные края.

Для прижизненного исследования можно взять эпителий конъюнктивы, языка и других доступных слизистых оболочек больного животного, а также пробы крови для выделения телец-включений в лейкоцитах. Последнее позволяет поставить диагноз в самый ранний период болезни, даже до появления типичных клинических признаков.

Выделение вируса. От больных животных берут кровь в период лихорадочного состояния, а также мазки из носа и конъюнктивы. От свежих трупов берут кусочки легких, трахеи, селезенки, почек, головного мозга и мочевой пузырь. Для серологических исследований берут кровь как можно быстрее после проявления клинических признаков и повторно спустя 14−21 день.

Для выделения полевого вирулентного вируса используют многослойную культуру клеток легких и почки собак и кроликов. Для размножения вирулентного ВЧС использовали альвеолярные макрофаги собак, полученные путем стерильного измельчения кусочков легкого собак. Этот метод оказался пригодным и для титрования вирулентного ВЧП.

Биопробу ставят на животных того вида, от которых исследуют материал. Лучше ее проводить на щенках через 15 дней после отъема от самок. Животные заболевают на 10−14 день, а иногда и через 1−2 месяца с характерными признаками болезни.

На куриных эмбрионах в первых пассажах ВЧП вызывает лишь слабое помутнение ХАО и гибель в 5−10% случаев. При дальнейшем пассировании поражение ХАО становится более выраженным. О наличии вируса судят по специфической гибели эмбрионов и поражению ХАО.

Для лабораторной диагностики чумы плотоядных, в частности для индикации (обнаружения) возбудителя и его идентификации (определение видовой принадлежности) применяют следующие методы:

• — иммунофлуоресценция (ИФ) — для установления раннего прижизненного диагноза;
• — реакция нейтрализации (РН) — для идентификации вируса в культуре клеток;
• — реакция диффузной преципитации (РДП) — позволяет обнаруживать возбудитель на 3−4-й день болезни;
• — реакция связывания комплемента (РСК) — для обнаружения антигена в органах и тканях больных животных и в культуре клеток;
• — реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) — для выявления специфических антител к возбудителю;
• — реакция пассивной гемагглютинации (РПГА);
• — биопроба на восприимчивость животных.

Для ретроспективной диагностики ЧП используются РН, РСК, РДП. Объектом исследования в данном случае являются пробы сыворотки крови переболевших животных. Реакции выполняются общепринятыми методами. Наличие АТ, выявляемых в любой из указанных реакций, в сыворотке крови животных свидетельствует о переболевании их чумой.

При дифференциальной диагностике необходимо исключить болезни, имеющие подобные с чумой клинические признаки: инфекционный гепатит, бешенство, болезнь Ауески, парвои коронавирусный энтерит, лептоспироз, пастереллез, сальмонеллез, авитаминоз В1, отравление и др.