Методы автоселекции. 
Анализ влияния введения в рацион коров многоклеточных цианобактерии Spirulina Platensis на переваримость и усвояемость питательных веществ кормов и продуктивность коров

Для выделения активных форм микроводорослей предварительное сравнение и отбор культур проводили по наиболее простым параметрам, таким как скорость роста в колбах с жидкой средой.

Активные (продуктивные) формы микроводорослей отбирали по скорости роста испытуемых форм при условии одинакового количества исходного посевного материала в среде. Скорость роста определяли по увеличению числа клеток.

Посевной материал готовится путем последовательных пересевов с возрастающей концентрацией питательной среды. Вначале культуры высевают в литровой колбе, содержащей 250−300 мл питательной среды. Эти колбы с посевом культуры выращивали при 25−28С под люминесцентные лампы круглосуточном освещении (3000−4000 лк), их содержимое количество периодически перемешивается (взбалтывается). Первичное культивирование посева культуры в этих условиях продолжается 6−8 дней, пока количество клеток культуры в суспензии не достигнет максимального роста.

Биохимические методы.

Определение содержания белка в биомассе микроводорослей и цианобактерии производилось согласно методу, предложенному Lowry.

Содержание общего белка в биомассе определяли методом Лоури. Содержание пигментов определяли по стандартным методикам. Для выделения и анализа пигментов суспензии клеток микроводорослей и цианобактерий центрифугировали в течение 15 минут при 5000 об/мин на центрифуге Eppendorf 5810R. Из осадка пигменты экстрагировали ацетоном. Полученную вытяжку пигментов фильтровали через фильтр с d = 100 нм. По полученным полосам поглощения определяют оптическую плотность раствора (D).

Метод Гансена (экстрагирования и количественное определение липидов).

Проведение анализа.

0,2−0,5 г сухого вещества + 3:1 алкогольным эфиром смешивая обрабатывают > первая порция смеси подкисляют по каплям НСl>алкогольно-эфирный экстракт сливают делительную воронку> обработать дополнительно петролейным эфиром до бесцветного> тщательно смешивают + 0,5% NaCl для разделения липидов на фракции > п. п. э. с липидами промывают 250мл 3-ды >высушивают безводным Na2 SO4 и фильтруют >в сушильном шкафу 300С выпаривают до 50мл объема >экстракт переносят в железные бюксы для выпаривания >до него (выпаривания) +0,1% C6H4(OH)2 для утилизации окисление липидов >подсушивают экстракт до постоянного веса в бюксах.

Приготовление реактивов.

0,5% NaCl — 0,5 г NaCl растворить в 100 мл дистиллированной воде 0,1% гидрохинон C6H4(OH)2. — 0,1 г C6H4(OH)2.+100 мл дистиллированной водой перемешать.

Алкогольно-эфирный экстракт 3:1 — 1часть петролейного эфираи 3часть этилового чистого спирта (30спирт +10 петролейный эфир).

Экстракция липидов будет зависеть от алкогольно-эфирного экстракта, потому что от алкогольного экстракта вся липидная часть переходит к петролейному эфиру при добавление 0,5% NaCl идёт процесс разделение липидов на фракции и также для увеличение объем экстракта будет зависеть от обработки экстракта петролейным эфиром для обесцвечивания, но для этого потребуется больше объема разведение алкогольного эфира. Определение липидов на количественный подсчет также зависеть от температурного режима выпаривания, если поднять температуру то вероятность потери объема веса липидов после выпаривания и возможно будет неправильный подсчет количество липидов.